關鍵詞:蛋白雙向電泳技術服務|實驗技術服務
簡介：世界*品牌蛋白雙向電泳技術服務|實驗技術服務原裝，質量保證,*。
蛋白雙向電泳技術服務|實驗技術服務——pCzn1質粒+Arctic Express宿主菌低溫表達體系。
我們具備豐富的蛋白表達設計經驗及實驗操作技巧，承諾客戶不成功不收費。在獲得重組蛋白產品的同時，我們也會提供相應的原始數據和原始圖片,不需要再額外花費精力重復實驗。另一方面，我們所有的實驗數據真實可信，我們提供原始的表達菌株和克隆質粒，客戶可以依據我們的實驗報告重復我們的實驗結果。
產品品牌：   http://www.。。ｃｏｍ/goodsid/fenleiyi/2868603/1.html    
測序實驗流程：
蛋白質組研究的發展以雙向電泳技術作為核心. 雙向電泳由O’Farrell’s于1975年建立并成功地分離約1 000個E.coli蛋白，并表明蛋白質譜不是穩定的，而是隨環境而變化. 雙向電泳原理簡明，*向進行等電聚焦，蛋白質沿pH梯度分離，至各自的等電點；隨后，再沿垂直的方向進行分子量的分離. 目前，隨著技術的飛速發展，已能分離出10 000個斑點（spot). 當雙向電泳斑點的全面分析成為現實的時候，蛋白質組的分析變得可行。
SDS-PAGE電泳
⒈ 配制10%的丙烯酰胺凝膠兩塊。配80ml凝膠溶液，每塊凝膠40ml，將溶液分別注入玻璃板夾層中，上部留1cm的空間，用MilliQ水（沒有milliq的話ddh2o也行，注，水云深浪按）、乙醇或水飽和正丁醇封面，保持膠面平整。聚合30分鐘。一般凝膠與上方液體分層后，表明凝膠已基本聚合。
⒉ 待凝膠凝固后，倒去分離膠表面的MilliQ水、乙醇或水飽和正丁醇，用MilliQ水沖洗。
⒊ 從-20℃冰箱中取出的膠條，先于室溫放置10分鐘，使其溶解。
⒋ 配制膠條平衡緩沖液I。
5．在桌上先放置干的厚濾紙，聚焦好的膠條膠面朝上放在干的厚濾紙上。將另一份厚濾紙用MilliQ水浸濕，擠去多余水分，然后直接置于膠條上，輕輕吸干膠條上的礦物油及多余樣品。這可以減少凝膠染色時出現的縱條紋。
⒍ 將膠條轉移至溶漲盤中，每個槽一根膠條，在有膠條的槽中加入5ml膠條平衡緩沖液I。將樣品水化盤放在水平搖床上緩慢搖晃15分鐘。
⒎ 配制膠條平衡緩沖液Ⅱ。
⒏ *次平衡結束后，*倒掉或吸掉樣品水化盤中的膠條平衡緩沖液I。并用濾紙吸取多余的平衡液（將膠條豎在濾紙上，以免損失蛋白或損壞凝膠表面）。再加入膠條平衡緩沖液Ⅱ，繼續在水平搖床上緩慢搖晃15分鐘。
⒐ 用濾紙吸去SDS-PAGE聚丙烯酰胺凝膠上方玻璃板間多余的液體。將處理好的第二向凝膠放在桌面上，長玻璃板在下，短玻璃板朝上，凝膠的頂部對著自己。
⒑將瓊脂糖封膠液進行加熱溶解。
⒒將10×電泳緩沖液，用量筒稀釋10倍，成1×電泳緩沖液。趕去緩沖液表面的氣泡。
⒓第二次平衡結束后，*倒掉或吸掉樣品水化盤中的膠條平衡緩沖液Ⅱ。并用濾紙吸取多余的平衡液（將膠條豎在濾紙上，以免損失蛋白或損壞凝膠表面）。
⒔將IPG膠條從樣品水化盤中移出，用鑷子夾住膠條的一端使膠面*浸末在1×電泳緩沖液中。然后將膠條膠面朝上放在凝膠的長玻璃板上。其余膠條同樣操作。
⒕將放有膠條的SDS-PAGE凝膠轉移到灌膠架上，短玻璃板一面對著自己。在凝膠的上方加入低熔點瓊脂糖封膠液。
⒖用鑷子、壓舌板或是平頭的針頭，輕輕地將膠條向下推，使之與聚丙烯酰胺凝膠膠面*接觸。注意不要在膠條下方產生任何氣泡。在用鑷子、壓舌板或平頭針頭推膠條時，要注意是推動凝膠背面的支撐膜，不要碰到膠面。
⒗放置5分鐘，使低熔點瓊脂糖封膠液*凝固。
⒘在低熔點瓊脂糖封膠液*凝固后。將凝膠轉移至電泳槽中。
⒙在電泳槽加入電泳緩沖液后，接通電源，起始時用的低電流（5mA/gel/17cm）或低電壓，待樣品在*走出IPG膠條，濃縮成一條線后，再加大電流（或電壓）（20-30mA/gel/17cm），待溴酚藍指示劑達到底部邊緣時即可停止電泳。
⒚電泳結束后，輕輕撬開兩層玻璃，取出凝膠，并切角以作記號（戴手套，防止污染膠面）。
⒛進行染色。
樣品要求
1、 樣品新鮮。
說明：組織樣本及細胞采樣后應立即放入液氮中速凍或加入樣品穩定劑，運輸過程中血液、血清樣品4℃保存，其它樣品-20℃保存，不超過48小時（若外地郵寄，除血液、血清及細胞外請用干冰）。
2、 樣品蛋白的總量不少于1mg。
說明：組織樣本每份約250-500mg；
細胞樣品每份106—107細胞數（一塊膠）；
血液、血清等樣品大于5mL，且不能溶血；
蛋白提取物要求蛋白濃度大于5mg/mL，總量不少于1mg，且均勻無沉淀，樣品中無鹽成分；
植物或真菌樣品量濕重不少于2g；
富含雜質或蛋白質含量低的樣品量濕重不少于3g。