HePG2細胞和L-02細胞的傳代：HePG2細胞屬人肝腫瘤的恒生細胞株，L-02細胞則是人胎肝細胞株，二者所使用的培養(yǎng)基可以是一樣的，即zui常見的DMEM。一干使用低糖的。
細胞長滿培養(yǎng)瓶時既要傳代。使用胰酶消化即可。用D-Hank's液配制成0.25%的胰酶。使用前37度預熱，細胞經(jīng)PBS清洗兩遍后，每個中號培養(yǎng)瓶加0.7ml的胰酶，胰酶的量可根據(jù)自己培養(yǎng)瓶的大小而定，原則就是能夠蓋滿瓶底。加入胰酶以后，為使酶的活性zui大，將培養(yǎng)瓶蓋擰緊后放回培養(yǎng)箱中，3分鐘左右即用含血清的培養(yǎng)基終止消化。如果在室溫情況下消化，時間相應加長，可以在顯微鏡下觀察，當細胞界限已十分清楚，即已分離為單個細胞，且有少量細胞漂起，則要終止消化了。

16HBE細胞株的傳代方法：
鏡下觀察細胞生長融合達70-80%，準備傳代。常規(guī)開紫外照射超凈臺20分鐘，同時把含10%胎牛血清的MEM培養(yǎng)基、0。25%胰酶、PBS放置37度培養(yǎng)箱中孵育。20分鐘后開始傳代。先棄掉舊培養(yǎng)液，加PBS洗一次，然后加0。25%胰酶2ml消化（指25乘25cm大小的培養(yǎng)瓶）細胞，鏡下觀察細胞，細胞突起回縮，細胞變圓，然后將培養(yǎng)瓶放置37度二氧化碳培養(yǎng)箱中孵育3分鐘左右（當然時間是隨機的，比如：新配的胰酶作用時間短一些，配制時間長的胰酶作用時間會長一些，當然要不斷地鏡下觀察），待細胞大部分消化下來（大部分細胞呈流沙狀脫離瓶壁），加4ml含10%胎牛血清的MEM培養(yǎng)基終止消化。反復吹打瓶壁上殘留的細胞，并將已消化下來的細胞吹打均勻，然后吸入離心管中1000轉(zhuǎn)離心1分鐘，然后棄掉上清，用手指將離心管中的細胞彈打均勻，加新培養(yǎng)基，吹打均勻，分至3個新的培養(yǎng)瓶中，補足培養(yǎng)液。將培養(yǎng)瓶平放，小心移入37度二氧化碳培養(yǎng)箱中培養(yǎng)置夜。次日觀察。

胃癌細胞AGS和SGC-7901的培養(yǎng)：細胞傳代時不能長的太滿,70%-80%就可以傳了.實驗前先把紫外燈打開照30分鐘,然后再把鼓風機開10分鐘,同時把培養(yǎng)液和胰酶放入37度水浴箱中,千萬記住不要蓋上水浴箱的蓋子.傳代時,我一般把培養(yǎng)瓶口過一下火,就直接把培養(yǎng)液到去,再用0.25%的胰酶(不含EDTA)消化.等細胞變圓,細胞間空隙加大就直接把培養(yǎng)液到去,不用離心,然后再吹打,雖說要輕柔,但很難吹打成單細胞懸液,所以稍用力也沒有關(guān)系.雖然操作不規(guī)范,但節(jié)省時間,細胞也沒有被污染.

AAV-293細胞的傳代:
AAV-293細胞較喜歡成團生長,比較嬌嫩,怕冷,傳代時不要一次從二氧化碳培養(yǎng)箱拿出很多瓶,一次只要拿2-3瓶出來傳就可以了,否則細胞很容易死掉.細胞在50-60%傳代,細胞生長狀態(tài).
用D-Hank's液配制成0.25%的胰酶消化半分鐘左右,棄去胰酶.觀察培養(yǎng)瓶是否有針孔樣縫隙,如有就可以加入培養(yǎng)液吹打細胞.消化過久,對細胞損害很大,而且成團很難吹打成單個細胞.然后加入含有10%小牛血清的DMEM.輕輕放入二氧化碳培養(yǎng)箱中培養(yǎng).

皮膚成纖維細胞和THP-1細胞：皮膚成纖維細胞是貼壁生長的。THP-1細胞是懸浮的。
由于我們實驗室養(yǎng)細胞的時間也不是很長，所以也只能說說自己平時的操作了。
先說皮膚成纖維細胞。當細胞鋪滿瓶底，也就是細胞與細胞之間沒有間隙時，就可以傳代了。一般十天左右傳一代。先吸棄舊培養(yǎng)液，用D-Hanks液洗兩遍，再加入0.25%的胰酶，加入的量以能覆蓋瓶底為準。加入后輕輕搖晃培養(yǎng)瓶使液體覆蓋瓶底，然后靜置兩分鐘左右，是能在顯微鏡下觀察，當細胞之間出現(xiàn)間隙且有一部分細胞呈現(xiàn)圓形后即可。吸去胰酶，加入含血清培養(yǎng)液，搖晃瓶子使培養(yǎng)液覆蓋瓶底就行了。因為血清可以終止胰酶的消化。然后吹打瓶底各處使細胞脫落。再分瓶補加培養(yǎng)液。
THP-1細胞的傳代就比較簡單了。可以有兩種傳代方法。如果鏡下觀察細胞狀態(tài)很好，沒有其它雜質(zhì)即細胞裂解物之類的，就可以采用直接傳代法。傳代前將細胞培養(yǎng)瓶直立一個半小時使細胞自然下沉。吸棄上層少量培養(yǎng)液約三分之一，將余下的培養(yǎng)液分成兩瓶，再分別補加培養(yǎng)液即可。如果鏡下觀察覺得培養(yǎng)液中有雜質(zhì)即可采用離心傳代法。如果細胞數(shù)目較多可以低速離心約600轉(zhuǎn)離心六分鐘，細胞可以沉淀下來而且可以去除細胞碎片之類的雜質(zhì)。如果覺得細胞數(shù)目不多比較寶貴，那就提高轉(zhuǎn)速可以1000轉(zhuǎn)離心六分鐘，這樣細胞損失很少但可能也有些雜質(zhì)會一起沉淀下來。離心后去除上清液，加入新的培養(yǎng)液吹打渾勻即可分瓶傳代了。
目前的方法就這些，希望對新手有所幫助

BHK－21的經(jīng)驗：
吸出培養(yǎng)基，吸得越干凈越好，直接加入1ml胰酶（T－25瓶），放到37度培養(yǎng)箱消化。是否需要用hanks 或 pbs之類得緩沖洗細胞并不必要，我都沒有洗，感覺應該洗一下更好，但也更麻煩并增加了污染得可能性。如果細胞長得太老，可以先加入1ml胰酶在細胞表面浸潤一下就吸出來，然后再加入1ml胰酶消化。胰酶在使用前預熱到37度。由于胰酶平時保存在4度，反復預熱對胰酶的活性不好，我的經(jīng)驗是將胰酶進行分裝，盡可能避免胰酶反復冷卻加熱。消化時間的選擇要根據(jù)實際情況決定，BHK－21還是比較好消化的，5－15min應該足夠了，消化時間太長對細胞不利。可以在顯微鏡下觀察消化情況，必要時可以拍打培養(yǎng)瓶幫助細胞分散，消化結(jié)束后直接加入培養(yǎng)基即可，胰酶會被血親滅活。一般在T－25瓶中留7－8ml培養(yǎng)基培養(yǎng)。在90％單層細胞時，1：4傳代2天后可長滿。如果使用的培養(yǎng)基偏堿先放在CO2培養(yǎng)箱中平衡。細胞生長中注意觀察培養(yǎng)基顏色（加入酚紅作指示劑），如出現(xiàn)偏黃表明細胞代謝產(chǎn)酸較多，此時如細胞未長滿應更換部分或全部培養(yǎng)基以確保細胞狀態(tài)不受影響。

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