1） 瘤細胞培養（無特殊要求） 
骨髓瘤細胞呈懸浮或輕微附著形式生長，如附著性生長的細胞多時，用吸管輕輕吹打或輕輕叩擊培養容器即可分離下來。通常要維持細胞于指數生長期（細胞培養時間為15~20小時），每3~5天取細胞0.2~1ml移入到10ml新培養液中，其zui大細胞密度不能超過5×105~106/ml。一般使用含有高糖的Dmem培養液，并補加有pH的穩定劑HEPES。 

2）免疫小鼠和脾細胞的制備 
免疫：取6~8周齡Balb/C雌鼠，基礎免疫2周，靜脈再加強免疫一次，3~5天后用于融合。 
脾細胞制備： 
1．引頸處死小鼠，用酒精消毒表體。 
2．無菌條件下取出脾臟，剃除結締組織和脂肪，用5ml無血清培養液沖洗一次。 
3．把脾臟置于已消毒的90~100目不銹鋼網或尼龍紗網中。 
4．在脾中部切開一小口，用注射器芯從一端輕輕壓擠，再用無血清培養液沖洗，令細胞通過紗網，收集入平皿中，或用注射器向脾臟內注入3 ml無血清培養液，反復抽吸數次方法獲取細胞，再制成細胞懸液亦可。 
5．把細胞懸液注入50ml離心管中，加10~20ml培養液，輕輕吹打數次，室溫中置5分鐘。 
6．離心（800~1000轉/分）計數，備用。 

3）飼細胞的制備：常用小鼠胸腺細胞或小鼠的腹腔細胞 
小鼠腹腔細胞制備方法： 
1．引頸處死小鼠，用酒精消毒表體。 
2．切開腹部皮膚剝向兩側，暴露出腹壁。 
3．用無菌7號針頭注射器，吸取3ml無血清培養液。 
4．用小鑷夾起腹壁，注入3ml無血清培養液，用手反復輕輕揉腹壁，再反復抽吸3~5次。 
5．收集末次吸得的細胞，注入50ml的離心管中，再加20ml無血清培養液，用吸管漂洗一次。 
6．離心，去上清，用含血清培養基調節細胞濃度為2×105/ml，接種入培養板中，24孔板每孔加0.1ml。