DNA實(shí)驗(yàn)技術(shù):變性聚丙烯酰胺凝膠電泳實(shí)驗(yàn)
本方法由于快捷、簡便及具髙分離度,對(duì)純化寡核苷酸非常有用。盡管得到率偏低(<50%),回收的量通常卻大大超過了大多數(shù)分子生物學(xué)應(yīng)用所需的量步驟亦可用于分離小RNA或其他單鏈多聚核苷酸。
實(shí)驗(yàn)方法
- 基本方法
實(shí)驗(yàn)材料 | 核苷酸 |
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試劑、試劑盒 | 濃氨水 TBE 丙烯酰胺 亞甲雙丙烯酰胺 TEMED 尿素 過硫酸銨 TE |
儀器、耗材 | 真空旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀 電泳儀 |
實(shí)驗(yàn)步驟 | 1. 用濃氨水將合成的寡核苷脧從可控孔度玻璃拄上洗脫下來。于55℃加熱5 h 以上。 2. 樣品移至離心管中,在Speedvac真空旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀中凍干,沉淀用0.2 ml 的水重懸。 3. 裝好灌膠裝置,準(zhǔn)備合適的凝膠溶液(表1)。對(duì)于10 cm×16 cm×1.6 mm 大小的凝膠,在一個(gè)真空過濾瓶中棍合下列成分: (1)25.2 g 尿素(終濃度7 mol/l) (2)6 ml 10×TBE 電泳緩沖液 (3)40%丙烯酰胺/2%亞甲雙丙烯酰胺溶液(所需量) (4)加水至60 ml (5)脫氣10 min,加入200 μl10%的過硫酸銨及30 μl 的TEMED。混合后灌膠,室溫下讓膠聚合30 min 以上。 表1、變性聚丙胺凝膠電泳能使相應(yīng)片段達(dá)到zui適分離度的丙烯酰胺濃度 4. 拔去梳子,將凝膠板固定在電泳槽上,用1×TBE下緩沖液注滿上層及下層槽。 5. 加樣前用2×甲酰胺加樣緩沖液將樣品作對(duì)倍稀釋。 6. 每一個(gè)2cm×1.6 mm 孔中可以加入2 μmol 合成量的25%。 7. 得到一個(gè)清哳的結(jié)果約需10 μg(50 μl 重懸樣品+50 μl 2×甲酰胺加樣緩沖液=每孔100 μl)。 8. 臨加樣前用移液器上下吹打TBE緩沖液數(shù)次以*洗滌樣品孔。 9. 加樣,在約5 V/cm2電壓降下電泳至溴酚藍(lán)到達(dá)膠底部。 10. 將凝膠板從電泳槽中取出,水平放置,撬開上層板。 11. 用塑料膜覆蓋凝膠,將板翻轉(zhuǎn),將凝膠的一角揭離玻璃板,放在塑料膜上,再用另一張塑料膜覆蓋凝膠。 12. 將凝膠放在帶熒光指示劑的薄層層析板上,用短波紫外燈跟蹤觀察條帶,條帶將在綠色背景下顯示暗跡。 13. 一個(gè)干凈的解剖刀將條帶直接切下或用墨水標(biāo)記后切出,剝?nèi)ニ芰夏ぃ瑢⒛z條轉(zhuǎn)移至離心管中。 14. 每2 cm 的膠條加0.5 ml 的0.3 mol/l 乙酸鈉,室溫下在旋轉(zhuǎn)揺床上洗脫。 15. 將溶液轉(zhuǎn)移至一個(gè)干凈的離心管中,不要帶入丙烯酰胺碎片。 16. 用等體積的酚抽提1次,氯仿抽提1次,乙醇沉淀,干燥,樣品用TE緩沖液或水重懸。 |
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