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小動物活體成像技術，是在1999年美國哈佛大學Weisslede提出的一項技術，該技術是指應用影像學方法,對活體狀態下的生物過程進行組織、細胞和分子水平的定性和定量研究。傳統的動物實驗需要在多個時間點分批處死動物以獲取實驗數據，而小動物活體成像技術可同時觀測多個實驗動物、對同一研究個體可進行持續、反復跟蹤成像，避免動物而造成的組間差異，節省動物成本，被廣泛應用于生命科學研究領域。其中小動物活體光學成像是通過一定方式對小動物進行光學標記，再通過成像技術及設備(如RevvityIVIS小動物活體光學
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內毒素檢查是注射劑安全性檢查中的重要檢查項目，我們接受過的每一針注射劑都已經過內毒素污染檢測。隨著生物制藥的發展，內毒素的檢測需求也日益增加，實驗室需要更高效、更精準的檢測方案來應對日益增長的檢測需求。然而，傳統的手動檢測方法存在諸多局限，如操作繁瑣、易出錯、費人工等，這些問題限制了實驗室的效率和檢測通量的提升。Lonza作為擁有幾十年內毒素檢測經驗的廠家，新近推出一體化端到端內毒素自動化檢測方案，不僅僅通過PyroTecPro™內毒素自動化工作流程解決測試過程中遇到的問題，還將MODA-EM™
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LizeteCaballero——加州大學舊金山分校血液和骨髓移植（BMT）實驗室高級主管在美國，37°C水浴是解凍細胞治療產品設備。這種方法需要手動將產品直接浸入溫度控制的水中，按摩袋子，或旋轉小瓶，以確保解凍。最重要的是，對于水浴，人們普遍擔心外源性細菌對微生物的污染，這種污染會使本已脆弱的患者進一步患病甚至死亡。LizeteCaballero一直關注質量和創新，他曾在加州大學舊金山分校（UCSF）血液和骨髓移植實驗室擔任高級主管近10年，現在是強生ChimericAntgen受體T細胞（C
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使用Victor NIVO多模式檢測已進行快速Ca2+信號檢測
G蛋白偶聯受體（GPCR）參與許多細胞信號轉導通路。目前，超過45%的藥物都以GPCR為靶點。確定GPCR細胞活性，可以通過監測細胞內Ca2+濃度的變化來實現。Ca2+直接或間接調節包括基因表達、細胞運動和收縮在內的許多生理過程。諸如蛋白激酶C（PKC）、轉錄因子NFAT或鈣調磷酸酶等多種蛋白質均受Ca2+濃度變化的調節。在此，我們介紹了使用VICTOR™Nivo多模式讀板儀以水母發光蛋白生物發光檢測方法，分析在GPCR刺激或抑制下的快速胞內Ca2+信號。化學發光法檢測原理是基于GPCR的激活引 -
細胞螢光素酶報告基因檢測受多種因素影響，例如載體狀態，細胞狀態，轉染量，轉染效率，裂解效率，加樣精度等等，因此實驗中一般需要做3個或以上復孔，且最好采用雙螢光素酶報告基因，以保證實驗結果的可信度。現將雙螢光素酶實驗檢測中常見的問題匯總如下：Q1:如何選擇載體？螢火蟲螢光素酶一般選取pGL-3、pGL-4或pmirGLO的載體，也可自己構建相應的載體；海腎螢光素酶一般選取phRL-TK或pGL-4載體，建議不使用強啟動子（如SV40，CMV），而選取中等強度的啟動子Q2:檢測結果螢光值過低或無螢光
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IL-18的功能和挑戰免疫功能：IL-18作為一種IL-1家族的促炎細胞因子，和IL-12、IL-15一樣具有活化記憶樣NK細胞的功能。IL-18調節Th1和Th2細胞的反應，也作用于非極化T細胞、NK/NKT細胞、B細胞、DC和巨噬細胞，在IL-12存在的條件下產生IFN-γ。不含IL-12但含有IL-2的IL-18則可誘導CD4NKT細胞、NK細胞甚至已分化的Th1細胞產生Th2細胞因子。IL-18和IL-3還能誘導肥大細胞和嗜堿性粒細胞產生IL-4和IL-13。除了免疫功能，IL-18還參
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核酸酶能夠有效去除各種形式的DNA和RNA，是去除宿主細胞核酸（HostCellDNA，HCD）的理想手段。但來自粘質沙雷氏菌的全能核酸酶（如Pannarase、Benzonase等產品）最適Na+/K+鹽濃度在0-20mM，有效范圍在0-150mM。多應用于中低鹽濃度的HCD去除。如果在病毒制備中遇到高鹽條件，怎么更好的去除宿主細胞核酸？在高鹽環境下，不僅可以抑制病毒載體聚集、提升產量。因此，在有的病毒制備工藝中，常采用高鹽方法進行細胞裂解來代替凍融裂解，釋放的病毒載滴度上會有提升。另外，高鹽
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胰蛋白酶（EC3.4.21.4）是一種絲氨酸蛋白酶，酶解賴氨酸及精氨酸C末端形成的肽鍵。重組胰蛋白酶是利用基因工程菌表達并采用層析色譜法純化獲得，其氨基酸序列與豬胰腺來源的陽離子型胰蛋白酶一致，分子量為24kDa，最適pH為7.0-9.0。可以替代豬胰腺來源胰蛋白酶應用于各種生物技術過程中，例如：重組胰島素生產、細胞培養、細胞發酵、蛋白質的酶解、測序和各種組織的細胞分離等。目前市面上常用的細胞消化液包括非酶法的EDTA和酶法的Trypsin、TrypLUS&TrypLE消化液：EDTA屬于非酶法
