試劑銷售大鼠胰島素說明書：

本試劑盒僅供體外研究使用、不用于臨床診斷!

預期應用

ELISA 法定量測定大鼠血清、血漿或其它相關生物液體中 INS 含量。

實驗原理

用純化的 INS 抗體包被微孔板，制成固相載體，往微孔中依次加入標本或標準品、生物素

化的 INS 抗體、HRP 標記的親和素，經(jīng)過*洗滌后用底物（TMB）顯色。TMB 在過氧化

物酶的催化下轉化成藍色，并在酸的作用下轉化成zui終的黃色。顏色的深淺和樣品中的 INS

呈正相關。用酶標儀在 450nm 波長下測定吸光度（OD 值），計算樣品濃度。

試劑盒組成及試劑配制

1、 酶標板：一塊（96 孔）

2、 標準品（凍干品）： 2 瓶，請臨用前 15 分鐘內(nèi)配制。每瓶以樣品稀釋液稀釋至 1ml，

蓋好后室溫靜置大約 10 分鐘，同時反復顛倒/搓動以助溶解，其濃度為 40 mIU/L，然后做系

列倍比稀釋（注：不要直接在板中進行倍比稀釋），分別配制成40 mIU/L，20 mIU/L，10 mIU/L，

5 mIU/L，2.5 mIU/L，1.25 mIU/L，0.625 mIU/L，樣品稀釋液直接作為空白孔 0 mIU/L。如

配制 20 mIU/L 標準品：取0.5ml （不要少于 0.5ml ）40 mIU/L 的上述標準品加入含有 0.5ml

樣品稀釋液的 Eppendorf 管中，混勻即可，其余濃度以此類推。

3、 樣品稀釋液：1×20ml。

4、 檢測稀釋液 A：1×10ml。

5、 檢測稀釋液 B：1×10ml。

6、 檢測溶液 A：1×120 /瓶（1:100）。臨用前以檢測稀釋液 A 1:100 稀釋（如：10 檢測

溶液 A / 990 檢測稀釋液 A），充分混勻，稀釋前根據(jù)預先計算好的每次實驗所需的總量配

制（100 /孔），實際配制時應多配制 0.1-0.2ml。7、 檢測溶液 B：1×120 /瓶（1:100）。臨用前以檢測稀釋液 B 1:100 稀釋。稀釋方法同檢

測溶液 A。

8、 底物溶液：1×10ml/瓶。

9、 濃洗滌液：1×30ml/瓶，使用時每瓶用蒸餾水稀釋 25 倍。

10、終止液：1×10ml/瓶（2 mol/L H2SO4）。

11、覆膜：5 張

12、使用說明書：1 份

自備物品

1、 酶標儀（建議儀器使用前提前預熱）

2、 微量加液器及吸頭，EP 管

3、 蒸餾水或去離子水，濾紙

標本的采集及保存

1、 血清：全血標本請于室溫放置 2 小時或 4 夜后于 1000 g 離心 20 分鐘，取上清即可檢

測，或將上清置于-20 或-80 保存，但應避免反復凍融。

2、 血漿：可用 EDTA 或肝素作為抗凝劑，標本采集后 30 分鐘內(nèi)于 1000 g 離心 15 分 鐘 ，

取上清即可檢測，或將上清置于-20 或-80 保存，但應避免反復凍融。

3、 其它生物標本：請 1000 g 離心 20 分鐘，取上清即可檢測，或將上清置于-20 或-80 保

存，但應避免反復凍融。

注：以上標本均應密封保存，4 保存應小于 1 周，-20 不應超過 1 個月，-80 不應超過 2 個

月；標本溶血會影響zui后檢測結果，因此溶血標本不宜進行此項檢測。

操作步驟

實驗開始前，各試劑均應平衡至室溫，試劑不能直接在 37 溶解；試劑或樣品配制時，均需充分混勻，混勻時盡量避免起泡。實驗前應預測樣品含量，如樣品濃度過高時，應對樣品進行稀釋，以使稀釋后的樣品符合試劑盒的檢測范圍，計算時再乘以相應的稀釋倍數(shù)。

1、 加樣：分別設空白孔、標準孔、待測樣品孔。空白孔加樣品稀釋液 100 ，余孔分別加

標準品或待測樣品 100 ，注意不要有氣泡，加樣 時將樣品加于酶標板底部，盡量不觸及孔

壁，輕輕晃動混勻，酶標板加上蓋或覆膜，37 溫育 2 小時。為保證實驗結果有效

性，每次實驗請使用新的標準品溶液。

2、 棄去液體，甩干，不用洗滌。每孔加檢測溶液 A 工作液 100 （臨用前配制），酶標板

加上覆膜，37 溫育 1 小時。

3、 棄去孔內(nèi)液體，甩干，洗板 3 次，每次浸泡 1-2 分鐘，大約 400 /每孔，甩干（也可輕

拍將孔內(nèi)液體拍干）。

4、 每孔加檢測溶液 B 工作液（臨用前配制）100 ，加上覆膜，37 溫育 1 小時。

5、 棄去孔內(nèi)液體，甩干，洗板 5 次，方法同步驟 3。

6、 每孔加底物溶液 90 ，酶標板加上覆膜 37 避光顯色（反應時間控制在 15-30 分鐘，當

標準孔的前 3-4 孔有明顯的梯度藍色，后 3-4 孔梯度不明顯時，即可終止）。

7、 每孔加終止溶液 50 ，終止反應，此時藍色立轉黃色。終止液的加入順序應盡量與底物

液的加入順序相同。

8、 立即用酶標儀在 450nm 波長測量各孔的光密度（OD 值）。

注：

1、 試劑準備：所有試劑在使用前應平衡至室溫，使用后請立即按照說明書要求保存試劑。

實驗操作中請使用一次性的吸頭，避免交叉污染。

2、 加樣：加樣或加試劑時，*個孔與zui后一個孔加樣之間的時間間隔如果太大，將會導

致不同的 “預溫育”時間，從而明顯地影響到測量值的準確性及重復性。一次加樣時間（包

括標準品及所有樣品）控制在 10 分鐘內(nèi)。推薦設置復孔進行實驗。

3、 溫育：為防止樣品蒸發(fā)，實驗時將加上蓋或覆膜的酶標板置于濕盒內(nèi)，以避免液體蒸發(fā) ；洗板后應盡快進行下步操作，任何時侯都應避免酶標板處于干燥狀態(tài)；同時應嚴格遵守給定

的溫育時間和溫度。

4、 洗滌：洗滌過程中反應孔中殘留的洗滌液應在濾紙上拍干，勿將濾紙直接放入反應孔中

吸水，同時要消除板底殘留的液體和手指印，避免影響zui后的酶標儀讀數(shù)。

5、 試劑配制：Detection A 及 Detection B 在使用前請手甩幾下或少時離心處理，以使管壁

或瓶蓋的液體沉積到管底。標準品、檢測溶液 A 工作液、檢測溶液 B 工作液請依據(jù)所需的

量配制使用，并使用相應的稀釋液配制，不能混淆。請 配制標準品及工作液，盡量不

要微量配制（如吸取檢測溶液 A 時，一次不要小于 10 ），以避免由于不準確稀 釋而造成

濃度誤差；請勿重復使用已稀釋過的標準品、檢測溶液 A 工作液、檢測溶液 B 工作液。

6、 反應時間的控制：加入底物后請定時觀察反應孔的顏色變化（比如，每隔 10 分鐘），

如顏色較深，請?zhí)崆凹尤虢K止液終止反應，避免反應過強從而影響酶標儀光密度讀數(shù)。

7、 底物：底物請避光保存，在儲存和溫育時避免強光直接照射。

洗板方法

1、 手工洗板方法：將推薦的洗滌緩沖液至少 0.4ml 注入孔內(nèi)，浸泡 1-2 分鐘，吸去（不可

觸及板壁）或甩掉酶標板內(nèi)的液體，在實驗臺上鋪墊幾層吸水紙，酶標板朝下用力拍幾次；

根據(jù)需要，重復此過程數(shù)次。

2、 自動洗板：如果有自動洗板機，應在熟練使用后再用到正式實驗過程中。

特異性

本試劑盒可同時檢測重組或天然的大鼠 INS，且與其它相關蛋白無交叉反應。

計算

各標準品及樣本 OD 值扣除空白孔 OD 值后作圖（七點圖），如設置復孔，則應取其平均

值計算。以標準品的濃度為縱坐標（對數(shù)坐標），OD 值為橫坐標（對數(shù)坐標），在對數(shù)坐

標紙上繪出標準曲線。推薦使用專業(yè)制作曲線軟件進行分析，如 curve expert 1.3，根據(jù)樣品OD 值，由標準曲線查出相應的濃度，乘以稀釋倍數(shù)；或用標準物的濃度與 OD 值計算出標

準曲線的回歸方程式，將樣品的 OD 值代入方程式，計算出樣品濃度，再乘以稀釋倍數(shù)，即

為樣品的實際濃度。

檢測范圍：0.625 mIU/L - 40 mIU/L，繪制標準曲線請取用以下濃度值： 40 mIU/L，20 mIU/L，

10 mIU/L，5 mIU/L，2.5 mIU/L，1.25 mIU/L，0.625 mIU/L。

zui低檢測限：0.156 mIU/L

說明

1. 在儲存及孵育過程中避免將試劑暴露在強光中。所有試劑瓶蓋須蓋緊以防止蒸發(fā)和污染，

試劑避免受到微生物的污染，因為蛋白水解酶的干擾將導致出現(xiàn)錯誤的結果。

2. 小心吸取試劑并嚴格遵守給定的孵育時間和溫度。請注意在吸取標本 / 標準品，酶結合

物或底物時，*個孔與zui后一個孔加樣之間的時間間隔如果太大，將會導致不同的 “預孵

育”時間，從而明顯地影響到測量值的準確性及重復性。而且，洗滌不充分將影響試驗結果。

3. 試劑盒保存：部分試劑保存于-20℃，部分試劑保存于 2-8℃，具體以標簽上的標示為準。

4. 濃洗滌液會有鹽析出，稀釋時可在水浴中加溫助溶。

5. 剛開啟的酶聯(lián)板孔中可能會含有少許水樣物質，此為正常現(xiàn)象，不會對實驗結果造成任

何影響。

6. 中、英文說明書可能會有不一致之處，請以英文說明書為準。

7. 所有的樣品都應管理好，按照規(guī)定的程序處理樣品和檢測裝置。

8. 有效期：6 個 月