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培養基是微生物培養的基質，其質量與使用方式直接影響實驗結果的準確性。以下從配制、滅菌、接種到儲存等環節，系統闡述培養基的使用細節及關鍵控制點。
一、配制前的準備
1. 配方確認與計算
- 根據實驗目的選擇培養基類型(如營養瓊脂、LB液體、沙保弱培養基等)，嚴格按照標準配方稱量成分。
- 注意特殊成分的處理：如酵母提取物、蛋白胨需充分溶解；痕量元素(如Mg²?、Ca²?)應預先溶解后添加。
- 計算水量時需扣除其他液體成分(如葡萄糖溶液、維生素溶液)的體積。
2. 容器與工具準備
- 使用玻璃或耐腐蝕塑料容器(如錐形瓶、培養皿)，避免金屬器具直接接觸培養基。
- 器皿需提前清洗并烘干，防止水分殘留導致滲透壓變化。
- 磁力攪拌器、pH計、電子天平等設備需校準，確保測量精度。
二、配制與滅菌
1. 溶解與混合
- 按配方順序依次加入成分，先加水后加耐熱物質(如瓊脂)，最后添加熱敏感物質(如抗生素、血清)。
- 加熱時持續攪拌，避免局部過熱導致焦糊或成分分解。
- 瓊脂融化后需煮沸1-2分鐘，確保膠體均勻分布。
2. pH調節
- 冷卻至50-60℃時調節pH，使用精密pH計(誤差≤0.01)逐滴加入1mol/L NaOH或HCl。
- 避免過度調節：每滴酸堿可影響pH約0.2-0.3，需緩慢調整至目標范圍(如大腸桿菌培養基pH 7.0±0.2)。
- 高溫下pH會因蒸發而升高，需預留0.1-0.2的補償值。
3. 滅菌操作
- 高壓蒸汽滅菌：液體培養基121℃、15分鐘；含糖培養基需115℃、20分鐘以防焦糖化。
- 過濾除菌：適用于熱敏感成分(如胎牛血清)，采用0.22μm濾膜正壓過濾。
- 滅菌后立即搖勻并冷卻，避免沉淀凝結或污染。
三、分裝與儲存
1. 分裝規范
- 固體培養基倒入培養皿時需均勻鋪展，厚度約3-5mm，避免氣泡產生。
- 液體培養基按實驗需求分裝(如試管裝量不超過1/5體積，搖瓶裝量為1/10)。
- 斜面培養基傾注后需靜置凝固，形成平整斜面。
2. 儲存條件
- 已滅菌培養基需在2周內使用，4℃冷藏時密封避光，防止水分蒸發或污染。
- 含淀粉類成分的培養基易老化，需現配現用。
- 添加劑(如抗生素、指示劑)宜單獨儲存，使用時按需加入。
四、接種與培養
1. 無菌操作
- 接種前用75%酒精擦拭工作臺面，點燃酒精燈形成無菌區。
- 接種環需灼燒滅菌，待冷卻后挑取菌種，避免高溫殺死目標菌。
- 劃線法接種時注意分區分離，第三區后不再返回前區，防止交叉污染。
2. 培養條件控制
- 溫度：嚴格按菌種需求設定(如大腸桿菌37℃、乳酸菌30℃、嗜熱菌55℃)。
- 氣體環境：厭氧菌需抽真空充氮或使用厭氧罐；CO?依賴菌需5%-10% CO?環境。
- 濕度與避光：培養箱內放置水盤維持濕度，光敏感菌種需用黑袋包裹。
五、常見問題與應對
1. 污染控制
- 霉菌污染：多因滅菌不干凈或操作時間過長，需延長滅菌時間或縮短接種流程。
- 細菌污染：可能來自吸管、槍頭或空氣，需更換無菌耗材并加強超凈臺維護。
- 支原體污染：定期檢測細胞系，使用含青霉素、支原體清除劑的培養基。
2. 培養基異常
- 不凝固：瓊脂濃度不足或pH過高，需補加瓊脂并重新滅菌。
- 顏色變化：指示劑失效或成分氧化，應檢查原料有效期并避光保存。
- 菌落形態異常：滲透壓偏差或缺乏生長因子，需復核配方并補充酵母提取物等。
六、特殊培養基的使用要點
1. 選擇性培養基(如麥康凱瓊脂)：
- 膽鹽、結晶紫需溶解，抑菌劑濃度需精確控制。
- 目標菌(如大腸桿菌)應形成典型菌落，抑制雜菌生長。
2. 鑒別培養基(如伊紅美藍瓊脂)：
- 顯色反應需在規定時間內觀察，避免過度曝光導致顏色掩蓋。
3. 富集培養基(如GN增菌液)：
- 專性菌種優先增殖，需配合選擇性平板進行二次分離。
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