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一、超濾離心管離心參數優化
轉速與時間
初次離心建議以推薦轉速的70%起步(如3000×g離心10分鐘)，觀察流速后逐級調整至4000×g，但不得超過濾膜耐受極限。
典型處理時間為10-30分鐘，具體取決于截留分子量(MWCO)和樣本體積。
溫度控制
離心機需預冷至4℃，減少熱變性吸附。低溫環境可延長膜使用壽命，但需注意濃縮時間可能延長。
加速度與平衡
離心加速度調至最低檔，減小對膜的壓力。
確保配對的超濾管質量與重心平衡，濾芯的放置位置和方向一致，避免離心過程中晃動或損壞。
二、回收率提升策略
濾膜選擇與預處理
根據目標分子量選擇MWCO比目標分子小2-3倍的超濾膜。例如，目標蛋白分子量為35kDa時，選擇10kDa截留分子量的超濾管。
新購超濾離心管的超濾膜含有微量甘油，使用前需用純水或緩沖液浸泡并置于冰箱預冷10分鐘。之后倒出純水，再將超濾管置于冰上預冷2-5分鐘。
樣本處理與加樣
樣本提前用0.22μm濾膜過濾，避免顆粒物堵塞超濾膜。
將樣本緩慢加入超濾管，液面不超過最大標線。加樣時操作要輕，避免破壞膜結構。
濃縮與洗脫
離心過程中每5分鐘暫停，用移液槍輕柔吹打截留層，防止大分子堆積形成濃差極化層。
截留體積控制在原始樣本量的1/10至1/20。濃縮倍數過高易導致蛋白質聚集，可在超濾中途添加緩沖液進行置換，分階段濃縮。
對于黏稠樣本(如含甘油或蔗糖)，需降低轉速10%-20%，延長離心時間。
回收操作
離心后，大分子留在上層，小分子和溶劑通過膜進入下層。外管濾液為小分子物質和溶劑；內管液體為大分子物質。
如需收集大分子物質，則另取外管，內管倒置1000×g離心1-2分鐘。
三、常見問題與解決方案
漏蛋白或檢測不到蛋白
原因：濾膜選擇不當、離心參數不合適、樣本初始濃度過低等。
解決方案：重新選擇合適的MWCO濾膜，調整離心參數，確保樣本初始濃度大于25μg/ml。
膜堵塞或流速過慢
原因：樣本中顆粒物過多、濾膜污染等。
解決方案：樣本提前過濾，定期清洗或更換濾膜。發現膜堵塞時，用0.1M NaOH浸泡1小時，再用純水沖洗三次。
回收率低
原因：濾膜吸附性、操作不當等。
解決方案：提前用1% BSA封閉濾膜30分鐘，減少非特異性吸附。操作時注意輕柔，避免破壞膜結構。
超濾后截留液出現沉淀
原因：蛋白質濃度過高、Buffer不合適等。
解決方案：用多根超濾管同時超濾，降低濃度；換不同的Buffer，直到蛋白不發生沉淀為止。對于沉淀，可用8M尿素溶解后再次離心。
四、維護與保養
清洗與消毒
一次性使用的超濾離心管，使用后直接丟棄。
如需重復使用，使用完的超濾管用純水反復清洗5次，再用0.1M NaOH浸泡1-2小時，隨后用20%乙醇清洗，并用超純水或緩沖液清洗3次。一般不建議重復使用超濾管超過5次。
長期保存
短期保存：用0.1M NaOH浸泡1-2小時，純水清洗3次，然后用75%乙醇浸泡，務必使濾膜保持濕潤，不能長菌。
長期保存：用0.1M NaOH浸泡1-2小時，純水清洗3次，然后用20%乙醇浸泡，務必使濾膜保持濕潤，不能長菌。
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