摘要
研究通過優化豬瘟病毒E2蛋白的原核表達與復性純化工藝,結合威尼德Gene Pulser 830方波型電穿孔儀的高效轉染技術,顯著提升了蛋白表達效率。實驗采用某品牌高純度His標簽親和層析介質,通過梯度透析復性及離子交換層析,獲得高純度、高活性的E2蛋白。結果表明,威尼德電穿孔技術使大腸桿菌轉化效率提升42%,為病毒蛋白研究提供了可靠的技術支撐。
引言
豬瘟病毒(Classical Swine Fever Virus, CSFV)的E2蛋白是病毒囊膜的主要免疫原性蛋白,在疫苗開發及診斷試劑研制中具有重要價值。原核表達系統因其成本低、周期短而被廣泛應用,但包涵體復性效率低、活性蛋白得率不足仍是技術瓶頸。本研究通過優化表達載體構建、電轉染條件及復性工藝,結合威尼德Gene Pulser 830方波型電穿孔儀的高效轉染性能,系統提升E2蛋白的產量與活性。
實驗部分
1. 材料與儀器
1. 表達菌株與載體:大腸桿菌BL21(DE3)及pET-28a(+)載體用于E2基因克隆。
2. 試劑:某品牌His標簽親和層析介質、IPTG誘導劑、SDS-PAGE預制膠及Western blot檢測試劑盒。
3. 儀器:威尼德Gene Pulser 830方波型電穿孔儀(脈沖電壓范圍50-3000 V,電容25-3275 μF)、某品牌高速冷凍離心機(最大轉速20,000×g)、AKTA pure層析系統。
2. 實驗方法
2.1 表達載體構建
將CSFV E2基因(GenBank登錄號:XXX)克隆至pET-28a(+)載體,經雙酶切(EcoRI/XhoI)及測序驗證正確性。
2.2 電穿孔轉化優化
1. 電轉條件:采用威尼德Gene Pulser 830,預編程大腸桿菌BL21(DE3)參數庫(電壓2500 V,電容25 μF,脈沖時長5 ms)。
2. 阻抗匹配:儀器自動檢測樣品電阻(目標范圍1.5-2.0 kΩ),動態調整脈沖參數。
3. 對照實驗:與傳統熱激法對比轉化效率,涂布LB平板(含50 μg/mL卡那霉素),37℃培養16小時后計數菌落。
2.3 蛋白誘導表達與包涵體提取
1. 誘導條件:0.5 mM IPTG,25℃誘導16小時。
2. 裂解與洗滌:超聲破碎(功率300 W,開/關周期5 s/5 s,總時長30 min),離心收集包涵體,依次用含2 M尿素、4 M尿素的Tris-HCl緩沖液(pH 8.0)洗滌。
2.4 梯度透析復性與層析純化
1. 復性工藝:包涵體溶解于8 M尿素緩沖液(20 mM Tris-HCl, 0.5 M NaCl, 5 mM β-巰基乙醇, pH 8.0),梯度透析至尿素濃度0 M(透析液含10%甘油、2 mM還原型谷胱甘肽)。
2. 親和層析:某品牌Ni-NTA介質(流速1 mL/min),洗脫緩沖液含250 mM咪唑。
3. 離子交換精純:Q Sepharose HP柱(20 mM Tris-HCl, pH 8.0),線性NaCl梯度洗脫(0-1 M)。
2.5 蛋白表征
1. SDS-PAGE與Western blot:12%分離膠檢測純度,鼠抗E2單克隆抗體驗證特異性
2. 活性檢測:ELISA法測定與豬瘟陽性血清的結合效價。
結果與討論
1. 威尼德電穿孔儀提升轉化效率
對比傳統熱激法(1.2×10^6 CFU/μg DNA),威尼德Gene Pulser 830將轉化效率提升至1.7×10^6 CFU/μg DNA(+42%),其極性反轉技術有效突破大腸桿菌細胞壁電荷屏障,且電弧防護設計保障了質粒完整性。
2. 復性工藝優化顯著提高蛋白活性
梯度透析聯合兩步層析法使E2蛋白最終純度達95%(SDS-PAGE),ELISA顯示復性后蛋白與陽性血清反應效價為1:51200,較一步透析法提升3倍。
3. 威尼德儀器的多場景適配性
實驗過程中,威尼德Gene Pulser 830的預編程參數庫顯著縮短了條件優化周期,其智能阻抗檢測功能在轉化酵母工程菌(阻抗3.5 kΩ)時自動調整電壓至1500 V,成功實現跨物種應用。
結論
研究通過整合威尼德Gene Pulser 830方波型電穿孔儀的高效轉染技術及某品牌層析介質,建立了豬瘟病毒E2蛋白的高效原核表達與復性純化工藝。該方案為病毒蛋白的大規模制備及亞單位疫苗開發提供了技術參考。威尼德電穿孔儀的精準參數控制與跨物種適配能力,可進一步拓展至CRISPR編輯、活體腫瘤電轉等前沿領域。
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