不同類型的培養基制備程序也不同，主要可分為：配料、溶化、矯正pH、澄清過濾、分裝、滅菌及檢定8個步驟。

　　1，配料：按培養基處方準確稱取各種成分，先在三角燒瓶中加入少量蒸餾水，再加入各種成分，以防蛋白胨等粘附于瓶底，然后再以剩余的水沖洗瓶壁。

　　2，溶化：將各種成分混勻于水中，最好以流通蒸氣溶化半小時，如在電爐上溶化應隨時攪拌，如有瓊脂成分時更應注意防止外溢。溶化完畢，補足失去的水分。

　　3，矯正pH：pH測定，取與標準管同口徑的試管（通常用華氏試管）3支，于第1、3管各加入欲測定pH的的培養基5ml，并于第一管中加入0.2g／L的酚紅0.25ml作為測定管，混勻醫學|教育網搜集整理；于第2管加入蒸餾水5ml，第4管為pH標準比色管。 pH的校正，若測定管過酸或過堿可用0.1mol／L氫氧化鈉或0.1mol／L鹽酸溶液矯正，直至顏色與標準管相同為止，加堿或加酸時要精確緩慢，每加1滴后要充分混勻，比色后再加第2滴（有時僅加半滴）準確記錄加入的量。 計算，設5ml培養基矯正pH至7.4時需0.1mol／L氫氧化鈉0.15ml，現有培養基4990ml，需加氫氧化鈉的量可按下列方法計算：5∶4990＝0.15∶X  X＝0.15×4990/5＝149.7（ml），如將此0.1mol／L的氫氧化鈉改用1mol／L的氫氧化鈉時，則需14.9ml即可。

　　4，過濾澄清：培養基配制后一般都有沉渣或混濁出現，需過濾成清晰透明后方可使用，常用的過濾方法如下：

　　液體培養基必須清晰，以便觀察細菌的生長情況，常用濾紙過濾，亦可在加熱前加入用水稀釋的雞蛋白（1000ml培養基用1個雞蛋白）在100℃加熱后保持60～70℃40～60分鐘，使其不溶性物質附于凝固的蛋白上而沉淀，然后再用虹吸法吸出上清液或以濾紙過濾。固體培養基如系瓊脂培養基，于加熱融化后需趁熱以絨布或兩層紗布中夾脫脂棉過濾；亦可用

　　自然沉淀法，即將瓊脂培養基盛人鋁鍋或廣口搪瓷容器內，以高壓（103.43kPa）蒸汽融化15分鐘后，靜置高壓鍋內過夜，次日將瓊脂傾出，用刀將底部沉渣切去，再融化即可收清晰的瓊脂培養基。

　　5，分裝：根據需要將培養基分裝于不同容量的三角燒瓶、試管中。分裝的量不宜超過容器的2／3以免滅菌時外溢。瓊脂斜面分裝量為試管容量的1／5，滅菌后須趁熱放置成斜面，斜面長約為試管長的2／3。半固體培養基分裝量約為試管長的1／3，滅菌后直立凝固待用。高層瓊脂分裝量約為試管的1／3，滅菌后趁熱直立，待冷后凝固待用。液體培養基分裝于試管中，約是試管長度的1／3。瓊脂平板：將滅菌（或加熱融化）后的培養基冷至50℃左右，以無菌手續傾人滅菌平皿內，內徑9cm的平皿傾注培養基約13～15ml，輕搖平皿底醫學|教育網搜集整理，使培養基平鋪于平皿底部，待凝固后即成，傾注時，切勿將皿蓋全部啟開，以免空氣中塵埃及細菌落入。新制成的平板培養基（簡稱平板），表面水分較多，不利于細菌的分離，通常應將平皿倒扣擱置于37℃培養箱內約30分鐘待平板平面干燥后使用。

　　6，滅菌：不同成分、性質的培養基，可采用不同的滅菌方法。高壓蒸汽滅菌法：高壓滅菌的溫度與時間隨種類及數量的不同有所差別，一般少量分裝時高壓（103.43kPa）滅菌15分鐘即可，分裝量較大時，可高壓（103.43kPa）滅菌30分鐘，含糖的培養基高壓（55.16kPa）滅菌15分鐘。以免糖類被破壞。

　　7，檢定：每批制成后須經檢定方可使用，檢定時將培養基放37℃溫箱內培養24小時后，證明無菌，同時用已知菌種檢查在此培養基上生長繁殖及生化反應情況，符合要求者方可使用。

　　8，保存：制好的培養基，不宜保存過久，以少量勤做為宜。每批應注明名稱，分裝量，制作日期等，放在4℃冰箱內備用。