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電轉百科指南⑤:CRISPR基因編輯的轉染技巧與注意事項(上篇)

來源:上海瑋馳儀器有限公司   2023年10月26日 18:09  

電轉百科指南①:如何提高電轉染效率?技術專家總結以下八點!

電轉百科指南②:不同細胞的電轉技巧,收藏了慢慢看!

電轉百科指南③:手把手教程來了,20種常用細胞的實驗方案

電轉百科指南④:每日問候你的細胞轉染結果好嗎,支原體污染要避免


本周第五期電轉百科我們將更進一步,為大家帶來CRISPR基因編輯的內容,本章內容將分為Knock-out與Knock-in上下篇,請繼續關注下一期的后續!

01/上篇

Knock-out

Lonza Nucleofector™核轉染系統可以廣泛應用于多種不同的場景,在不同的應用場景下通常會使用DNA或RNA或蛋白進行外源基因的遞送,以實現特殊的應用需求。



以CRISPR系統為例,全球有大量的客戶使用Lonza Nucleofector™核轉染系統開展基于CRISPR系統的基因編輯相關工作并發表文章且逐年遞增。



▲ Google Scholar Search for ‘Nucleofector CRISPR’, July 2023

· 對于CRISPR的轉染,即可以通過表達Cas9的質粒系統如PX458載體來實現“剪刀” Cas9的遞送,也可以通過Cas9 mRNA的方式在細胞質中直接翻譯,與sgRNA形成復合物后再進入細胞核進行基因組編輯。當然我們也可以在轉染前提前將Cas9蛋白與sgRNA進行孵育形成RNP復合物,再通過電轉染遞送到細胞內,直接進入細胞核進行基因組編輯。



· 對于CRISPR應用,主要用于knock-out或Knock-in

Knock Out:盡管Knock-out已經比較容易實現高效的敲除效率,但對于陌生的細胞或者全新的位點依然需要進行適當的調整。包括但不限于以下方面:

不同的Nucleofection條件測試

Lonza為多種常用的細胞提供預優化的電轉程序,電轉程序與細胞相關,通常來說,即使電轉不同的核酸底物(DNA,RNA,蛋白等)無需對電轉程序進行調整,但在越來越多的原代細胞轉染中,使用RNA或RNP進行細胞基因編輯時,可以通過對程序進行適當的微調,以獲得更高編輯效率的同時,更好的維持細胞的活率及功能。對于常見的T cell,HSPC,NK,DC等免疫細胞可以對Nucleofection脈沖條件進行適當調整。



▲ Akiko Seki et al., 2018

不同的crRNA/sgRNA測試

對于同一基因不同的sgRNA表現可能不同,目前已有大量設計sgRNA序列的工具,部分工具也可以為其打分,但通常還是建議盡可能測試多個sgRNA以確保實驗結果。甚至結合多條sgRNA對同一基因進行編輯。



▲ Akiko Seki et al., 2018

不同Cas9蛋白的測試

對于不同供應商的Cas9蛋白也存在切割活性的差異,對于WT Cas9和一些經過優化的Cas9蛋白也會導致編輯效率的差異。



▲ Akiko Seki et al., 2018



▲ Liyang Zhang et al., 2021

Cas9用量測試

除對不同Cas9蛋白來源的測試外,Cas9的用量也是需要在試驗優化中考量的因素。



▲ Liyang Zhang et al., 2021

Cas9:sgRNA比例測試

對于Cas9蛋白和sgRNA形成的蛋白復合物,以何種比例添加進行孵育轉染必定也是重要的因素。在大多數的出版物中,Cas9:gRNA的比值在1:1.2 - 1:5之間。



▲ Akiko Seki et al., 2018

Electroporation Enhancer

有時可以考慮使用electroporation enhancer以實現更高的編輯效率。



▲ Matteo Martufi et al., 2019

市面上大多數提供Cas蛋白或sgRNA的供應商通常也會提供一份詳細的protocol,可以優先參考這些protocol或相關的paper。除上面提到的方向外,供體差異,轉染的時間點,對于免疫細胞(如T細胞),何種激活劑激活也可能會對最終的結果造成影響。


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