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對于大多數需使用細胞系的操作，如轉染、細胞融合技術、冷凍保存和傳代培養等，有必要在操作前對細胞數進行定量。因為如果接種細胞的密度過高，實驗還沒結束細胞就會出現接觸抑制，影響細胞狀態，蛋白的表達也會受到影響；但如果密度過低最后收集到的樣品過少，檢測不到，我們要花額外的時間等待細胞長到合適的密度。
使用相同數量的細胞將保持最佳生長，并有助于使用細胞培養的程序標準化，這反過來也使結果具有更好的再現性。所以細胞計數非常重要，它是一個實驗成功的基礎。
文章開頭提到的血球計數板是以往細胞計數常用的方式，它的使用較為耗時，還易受操作者主觀判斷的影響，并且某些細胞類型，如形成簇的細胞類型，難以用這種方法計數。
現有的細胞計數設備可提供替代的細胞定量方法，這就包括我們的Scepter™細胞計數儀。
Scepter™細胞計數儀采用“計數金標準”庫爾特原理。
Scepter感應器吸入精確的樣本體積；
細胞穿過感應器小孔時，電阻值增加。電阻值的增加導致電壓的增加；
每個細胞經過時引起的電壓的增加作為一個脈沖被記錄下來；
用直徑和細胞數目繪制直方圖，脈沖的大小代表細胞的大小，脈沖的數目代表細胞的個數。
最大的特點是：
計數精準，提供基于細胞大小的直方圖（如上圖）；
手持式體積小巧；
可以給出細胞體積；
可以進行復雜的混合型的細胞計數；
計數迅速，平均在30秒之內完成計數（最快14秒）。
檢測范圍與應用
基于細胞直徑以及樣品濃度的感應器選擇指南：
樣本濃度范圍 （個/毫升） | 50,000-1,500,000個/毫升 | 10,000-500,000個/毫升 |
直徑范圍(µm) | 4-20 µm | 6-36 µm |
適合測量的顆粒直徑范圍 | 5-15 | 8-25 |
| 感應器規格 | 40 µm | 60 µm |
|---|
人體細胞中最小的是血小板，直徑只有約2微米；最大的是成熟的卵細胞，其直徑在200微米左右，鴕鳥卵細胞甚至可以達到長15～22厘米,直徑14至15厘米。細胞的直徑和大小會直接影響覆蓋度百分比，同樣的接種濃度，COS7和293細胞最終的覆蓋度有著極大的區別。
讓我們來看看在分離PBMC后和流式直接對比的數據：
外周血單個核細胞(Peripheral blood mononuclear cell, PBMC)是外周血中具有單個核的細胞，包括淋巴細胞和單核細胞。外周血單個核細胞主要的分離方法是Ficoll-hypaque(聚蔗糖－泛影葡胺)密度梯度離心法。
離心獲得PBMC后分別染色通過流式進行分群(Lymphocyte 和Monocyte)和計數，ScepterTM3.0的結果和流式在趨勢上具有很好的相關性。
無論是分群還是計數的回歸系數都達到了0.98以上。Scepter3.0可以準確對PBMC細胞進行計數和分群。
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