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分享免疫熒光實驗要點

來源:上海撫生實業有限公司   2022年05月23日 11:56  

標記免疫技術發展蕞早的一種是免疫熒光,它是在免疫學、生物化學和顯微鏡技術的基礎上建立起來的一項技術,通過將抗體與一些示蹤物質結合,利用抗原抗體反應進行組織或細胞內抗原物質的定位。免疫熒光步驟包括,細胞固定和通透,封閉,孵育一抗,二抗等。除了這些基本步驟,接下來的實驗方法希望可以幫到您。

1. 細胞固定和通透

為達到蕞佳的檢測效果,細胞需要經過固定和通透。步驟很重要,細胞和抗原需要保證蕞佳的結構,并利于抗體與抗原結合。通常情況下,

2. 抗體特異性

免疫熒光需要用到特異性非常強的抗體,可以避免高背景和不理想的蛋白定位結果。在大多數情況下,純化抗體的效果很好,但是正確的對照可以幫助精-準定位抗原。使用只有二抗染色的片子作為陰性對照,有利于減少降低背景干擾。

3. 合適的抗體稀釋比例

通過優化抗體稀釋比例來優化染色,通常情況下 1ug/ml 的純化抗體或者 1:100-1:1000 的抗血清足夠達到特異性染色的結果。但在能保證低背景染色的前提下,可以通過增加濃度來提高信號強度。如果是第1次使用該抗體或測定某抗原,強烈建議濃度梯度實驗。

4. 優化緩沖液和封閉劑

盡管很多抗原在常見的 Buffer 如 PBS 中可以很好的被染色,但是對于某些目的抗原,更換一下含有不同離子的緩沖液,比如鈣、鎂、鉀等,可以帶來很大程度上的改善。Rockland 可提供優化過的 IHC 用封閉緩沖液,同樣適用于熒光染色實驗。

5. 選擇正確的二抗

如果您需要做免疫實驗,我們強烈建議您選擇進行過預吸附的二抗進行單染實驗;如果是雙重甚至是多重染色,那么必須使用預吸附的二抗。同時,請優先選擇來自同一物種的二抗。

6. 使用合適的細胞密度

選擇合適的細胞數量進行染色,當細胞數量過多時,細胞結構不好,導致染色背景深,低細胞密度,會使細胞貼壁不佳,狀態不好。

7. 多重染色

對同一樣本進行兩個不同抗原的檢測時,可以用各自的抗體進行同時染色,但要求兩個一抗的種屬來源不同,標記物不同,而二抗的種屬來源需保持一致。

8. 降低背景

高背景是免疫熒光常見的問題,解決此問題可以用二抗來源的正常血清代替 BSA 做封閉液,降低抗體濃度,增加洗滌次數,洗滌至少三次,每次五分鐘,洗滌液為 PBS+0.05%Tween。

9. 封片

作為免疫熒光的蕞后一步,可以提高折射率,保護樣品。

10. 數據分析

觀察整體樣片時,選擇具有代表性的細胞進行數據獲取與分析。

以上就是免疫熒光檢測的 10 種方法,希望可以更好的服務于您的實驗,為您的實驗保駕護航!




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