主要用途
組織SRC激酶活性光譜法定量檢測試劑是一種旨在通過多肽底物受到SRC磷酸化后,進而由丙酮酸激酶和乳酸脫氫酶連續循環法反應系統,測定產生ADP過程中,伴隨的還原型煙酰胺腺嘌呤二核苷酸(NADH)的氧化反應, 即采用光譜法測定其氧化后峰值的變化,以分析組織裂解樣品中SRC活性的經典的技術方法。該技術由大師級科學家精心研制、成功實驗證明的。其適用于各種組織裂解萃取液樣品(動物、人體)、部分或*純化酶樣品中SRC激酶的定量檢測,以及抑制劑和激活劑的篩選。產品嚴格無菌,即到即用,操作簡捷,性能穩定,高度敏感。
實驗步驟
一、 待測樣品準備
1. 手術取出動物組織,并秤重500毫克組織重量
2. (選擇步驟)放進預冷的15毫升錐形離心管
3. (選擇步驟)加入XX毫升清理液(Reagent A)清洗
4. (選擇步驟)抽去清理液
5. 移入到一個液氮凍存管
6. 即刻放進液氮罐過夜
7. 次日從液氮罐里取出,即刻(最快速度)用研磨棒碾碎組織成粉末狀(注意:切莫使組織凍融)
8. 放進一個15毫升錐形離心管
9. 加入置于冰槽里的XX微升裂解液(Reagent B)
10. 強力渦旋震蕩30秒,充分混勻
11. 放進冰槽里孵育30分鐘,期間每10分鐘強力渦旋震蕩30秒(注意:如需暫時停止,放進-70℃冰箱里儲存備用)
12. 即刻放進4℃臺式離心機離心10分鐘,速度為10000g
13. 小心移取上清液到新的無菌的1.5毫升離心管
14. 移取10微升進行蛋白定量檢測(注意:建議使用 Bradford蛋白質濃度定量試劑盒-GMS30030.1)
15. 即刻放進-70℃保存或置于冰槽里繼續后續操作
二、 測定準備
1. 準備好待測樣品(例如組織裂解懸液等),置于冰槽里
2. 設定好分光光度儀(溫度為30℃):波長為340nm,間隔1分鐘,讀數6次(共5分鐘),并置零
3. 緩沖液(Reagent C)置于室溫下均衡溫度
三、 背景對照測定
1. 移取XX微升緩沖液(Reagent C)到新的比色皿
2. 加入XX微升酶促液(Reagent D)
3. 加入XX微升反應液(Reagent E)
4. 加入XX微升底物液(Reagent F)
5. 放進30℃培養箱里靜置3分鐘
6. 加入XX微升陰性液(Reagent G)
7. 上下傾倒數次,混勻(限定在3秒之內)
8. 即刻放進分光光度儀檢測,此為背景空對照:340波長讀數0分鐘 -340波長讀數5分鐘
四、 樣品測定
1. 移取XX微升緩沖液(Reagent C)到新的比色皿
2. 加入XX微升酶促液(Reagent D)
3. 加入XX微升反應液(Reagent E)
4. 加入XX微升底物液(Reagent F)
5. 放進30℃培養箱里靜置3分鐘
6. 加入5微升待測樣品(注意:50微克組織裂解蛋白;樣品須溶解)
7. 上下傾倒數次,混勻(限定在3秒之內)
8. 即刻放進分光光度儀檢測,此為樣品總活性讀數:340波長讀數0分鐘 -340波長讀數5分鐘
五、 計算樣品活性 單位=微摩爾NADH/分鐘
六、 酶標板測定
1. 在96孔酶標板上做好相應標記:背景對照和樣品
2. 分別移取XX微升緩沖液(Reagent C)到96孔板中
3. 分別加入XX微升酶促液(Reagent D)
4. 分別加入XX微升反應液(Reagent E)
5. 分別加入XX微升底物液(Reagent F)
6. 輕輕搖動96孔酶標板
7. 在30℃溫度下孵育3分鐘
8. 分別加入XX微升陰性液(Reagent G)或待測樣品(50微克組織裂解懸液蛋白)到相應孔中(注意:樣品須清澈)
9. 輕輕搖動酶標板
10. 即刻放進酶標儀檢測:0分鐘讀數和5分鐘讀數
11. 活性計算:
注意事項
1. 本產品為25次操作,包括背景操作
2. 操作時,須戴手套
3. 系統操作過程中,背景測定只需1次
4. 樣品處理忌用磷酸緩沖溶液
5. 樣品須澄清,至關重要
6. 加入樣品啟動反應后3秒內即刻光譜測定
7. 測定值由高到低變化;測定可持續30分鐘
8. 光譜測定后,比色皿須清洗*
9. 樣本測定0分鐘讀數高于5分鐘讀數表明具有酶活性
10. 建議待測樣本蛋白濃度為50微克/5微升(本公司提供 Bradford蛋白質濃度定量試劑盒-GMS30030.1)
11. 如果待測樣品濃度過高或過低,可以調整樣品濃度
12. 可以使用SRC抑制劑(4-(4′-Phenoxyanilino)-6,7-dimethoxyquinazoline;IC50=44納摩爾)作為抑制劑對照或陰性對照
13. Src激酶活性單位濃度定義:在30℃溫度下,pH 7.5條件下,每分鐘內能夠氧化1微摩爾還原型煙酰胺腺嘌呤二核苷酸(NADH)所需的酶量作為一個活性單位
14. 本公司提供系列蛋白激酶檢測試劑產品
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