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硫氧還蛋白氧化還原酶(TrxR)活性檢測試劑盒說明書

來源:青島捷世康生物科技有限公司   2021年09月13日 10:43  

可見分光光度法

注意:正式測定之前選擇 2-3 個預期差異大的樣本做預測定。

規格:50T/48S

產品內容:

試劑一:液體 90mL×1 瓶,4℃保存。

試劑二:粉劑×1 瓶,4℃避光保存。臨用前加入 5 mL 蒸餾水溶解。

試劑三:粉劑×1 瓶,4℃保存。臨用前加入 5 mL 蒸餾水溶解。

試劑四:液體×1 支,-20℃避光保存。

產品說明:

TrxR 是一種 NADPH 依賴的包含 FAD 結構域的二聚體硒酶,屬于吡啶核苷酸-二硫化物氧化還原酶家族成員,與硫氧還蛋白以及 NADPH 共同構成了硫氧還蛋白系統。TrxR GR 活性類似,催 GSSG 還原生成 GSH,是谷胱甘肽氧化還原循環關鍵酶之一。

TrxR 催化 NADPH 還原 DTNB 生成 TNB NADP+TNB 412 nm 有特征吸收峰,但還原型谷胱甘肽與 DTNB 同樣能反應生成 TNB,因此本試劑盒利用 2-乙烯吡啶抑制樣品中原有的還原型谷胱甘肽,通過測定 412nm 波長處 TNB 的增加速率,即可計算 TrxR 活性。

自備儀器和用品:

可見分光光度計、低溫離心機、可調節移液器、1mL 玻璃比色皿和蒸餾水。

操作步驟:

一、粗酶液提取:

1. 組織:按照組織質量g):試劑一體積(mL)15~10 的比例建議稱取約0.1g 組織,加入1mL 試劑一)進行冰浴勻漿。10000rpm4℃離心10min,取上清置冰上待檢測。

2. 細菌、真菌:按照細胞數量104 :試劑一體積mL500~10001 的比例(建議500  萬細胞加入1mL 試劑一),冰浴超聲波破碎細胞(功率300w,超聲3 s,間隔7s,總時間3min), 然后10000rpm4℃,離心10min,取上清置于冰上待測。

測定前將上清液與試劑四以 501 的體積比混勻即取 100μL 上清液加入 2μL 試劑四混合37水浴 30min 后至冰上。

二、TrxR 測定操作:

1. 分光光度計預熱 30 min 后,調節波長到 412nm,用蒸餾水調零。

2. 試劑一在 25℃(一般物種)或者 37℃(哺乳動物)預熱 30min

3. 空白管:取 1mL 玻璃比色皿,加入 100μL 試劑二,100μL 試劑三,800μL 試劑一,迅速混勻后 412 nm 測定 10 s 時吸光度,然后將比色皿放入 37℃水浴 5min 后混勻立即測定 310 s 吸光度,記為 A1 和 A2。△A 空白管=A2-A1。

4. 測定管:取 1mL 玻璃比色皿,加入 100μL 試劑二,100μL 試劑三,700μL 試劑一,100μL 上清液,迅速混勻后于 412 nm 測定 10 s 時吸光度,然后將比色皿放入 37℃水浴 5min 后混勻立即測定 310 s

5. 吸光度,記為 A3 和 A4。△A 測定管=A4-A3。

三、TrxR 活性計算:

(1) 按蛋白濃度計算

活性單位U定義:在 25℃或者 37℃中,每毫克蛋白每分鐘催化 1μmol DTNB 還原為一個酶活力單位。

TrxRU/mg prot=A 測定管-A 空白管)÷(ε×d)×V 反總÷(Cpr×V )÷T

=0.147×A 測定管-A 空白管)÷Cpr

(2) 按樣本鮮重計算

活性單位U定義:在 25℃或者 37℃中,每克樣品每分鐘催化 1μmol DTNB 還原為一個酶活力單位。

TrxRU/g 鮮重)=A 測定管-A 空白管)÷(ε×d)×V 反總÷(V ÷V 樣總×W)÷T

=0.147×A 測定管-A 空白管)÷W

(3) 按細胞數量計算

活性單位(U)定義:在25℃或者37℃中,每104 個細胞每分鐘催化1μmol DTNB 還原為一個酶活力單位。

TrxRU/104 cell=A 測定管-A 空白管)÷(ε×d)×V 反總÷(細胞數量×V ÷V樣總)÷T

= 0.147×A 測定管-A 空白管)÷細胞數量

εTNB 412nm 處的微摩爾消光系數,0.0136 L/μmol/cmd:比色皿光徑,1cmV 反總: 反應體系總體積L1000μL=0.001 LCpr:上清液蛋白質濃度mg/mL,需要另外測定;V 樣:加入反應體系中上清液體積mL100μL=0.1 mLT:反應時間min5 minW:樣品鮮重,g V 樣總:提取液體積,1mL;細胞數量:以 104 為單位,以萬計。

 

注意事項:測定前須先取 12 個樣做預實驗,使得吸光值在 5min 內程線性變化。哺乳動物組織及血液制品 TrxR 活力測定時,一般須用蒸餾水稀釋 5 倍左右;測定過程操作須迅速。

 


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