你知道PCR反應體系主要包含那些嗎？讓我們一起來看看吧！
一、模板（template)
模板即擴增用的DNA，可以是任何來源DNA(如基因組DNA、質粒DNA等)或RNA（如總RNA、mRNA、tRNA、rRNA、病毒RNA等），但必須符合兩個條件：一是純度必須較高，二是濃度不能太高以免抑制。模板是待擴增的目的基因或特異片段，如診斷病人是否攜帶有突變基因時，其模板就是提取的病人血液中的DNA或RNA片段。PCR對模板DNA的純度不要求很高，但應盡量不含有對PCR反應有抑制作用的雜質存在，如蛋白酶、核酸酶、Taq DNA聚合酶抑制劑、能與DNA結合的蛋白質。
二、引物（primers)
人工合成的一對引物可以分別與兩條模板DNA互補結合的寡核苷酸序列，其中一條稱為上游引物，另一條稱為下游引物。引物是PCR特異性反應的關鍵，PCR產物的特異性取決于引物與模板DNA互補的程度。理論上，只要知道任何一段模板DNA序列，就能按其設計互補的寡核苷酸鏈做引物，利用PCR就可將模板DNA在體外大量擴增。引物濃度一般為0.1~0.5umol/L，濃度過高會引起錯配和非特異擴增，濃度過低則得不到產物或產量過低。引物長度一般為15~30bp,引物過長或過短都會降低特異性。其3'末端一定要與模板DNA配對，末位堿基最好選用A、C、G(因T錯配也能引發鏈的延伸)。引物GC占45%~55%，堿基應盡量隨機分布，避免嘧啶或嘌呤堆積，兩引物之間不應有互補鏈存在，不能與非目的擴增區有同源性。
三、底物(dNTP)
dNTP包括dATP、dTTP、dGTP、dCTP。dNTP溶液呈酸性，使用時應配成高濃度后，以1mol/L NaOH或1mol/L Tris-HCl的緩沖液將其pH調節至7.0~7.5，小量分裝，-20℃冰凍保存。一般存儲濃度為10mo/L，各成分以等當量配制，反應終濃度為20~200umol/L，如其中任何一種濃度不同于其他幾種時（偏高或偏低），就會引起錯配。高濃度可加速反應，但同時增加錯誤摻入和實驗成本；低濃度可提高精確性，而反應速度會降低。dNTP的質量與濃度和PCR擴增效率有密切關系，dNTP粉呈顆粒狀，如保存不當易變性失去生物學活性。多次凍融會使dNTP降解。dNTP能與Mg2+結合，使游離的Mg2+濃度降低。當PCR需要較高濃度的dNTP時，應在反應體系中適當增加Mg2+的濃度。
四、DNA聚合酶
PCR所用的酶主要有Taq和Pfu兩種來源，分別來自兩種不同的噬熱菌。其中，Taq擴增效率高但易發生錯配：Pfu擴增效率弱但有糾錯功能。所以，實際使用時必須根據需要做不同的選擇。目前使用最多的是Taq酶。該酶在92.5℃、95.0℃和97.5℃時，其半衰期分別為130分鐘、40分鐘和5~6分鐘，可見該酶具有良好的熱穩定性。Taq酶還具有良好的延伸效率，其生物學活性在75~80℃時最高，一般用72℃，每一個酶蛋白分子每秒可延伸約150個核苷酸。在70℃時，延伸速率為60個核苷酸/秒以上。當溫度超過80℃時，該酶延伸速率明顯下降，可能與引物—模板遭到破壞有關。其最適pH值為8.3~8.5，能催化以DNA單鏈為模板、以堿基互補原則為基礎、按5'→3'方向逐個將dNTP分子連接到引物的3'端、合成一條與模板DNA互補的新的DNA子鏈，無3'→5'的外切酶活性，沒有校正功能。某種dNTP或Mg2+濃度過高，會增加其錯配率。用量一般為0.5~5.0個單位/100uL。
五、PCR緩沖液(PCR buffer)
緩沖液的成分最為復雜，除水外一般包括四種有效成分：①緩沖體系，一般使用HEPES或MOPS緩沖體系；②一價陽離子，一般采用鉀離子，但在特殊情況下也可使用銨根離子；③二價陽離子，即鎂離子，根據反應體系確定，除特殊情況外不需調整；④輔助成分，常見的有DMSO、甘油等，主要用來保持酶的活性和幫助DNA接觸纏繞結構。
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