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還原型谷胱甘肽(reduced glutathione, GSH)試劑盒說明書

閱讀:408      發布時間:2023-10-16
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還原型谷胱甘肽(reduced glutathione, GSH)試劑盒說明書

 微量法100T/96S

 

注    意:正式測定之前選擇2-3個預期差異大的樣本做預測定。

測定意義:

GSH是細胞內最主要的抗氧化巰基物質,在抗氧化、蛋白質巰基保護和氨基酸跨膜運輸等中具有重要作用。還原型與氧化型比值(GSH/GSSG)是細胞氧化還原狀態的主要動態指標。因此,測定細胞內GSH和GSSG含量以及GSH/GSSG比值,能夠很好地反映細胞所處的氧化還原狀態。

 

測定原理:

DTNB與GSH反應生成復合物,在412nm處有特征吸收峰;其吸光度與GSH含量成正比。

 

自備儀器和用品:

低溫離心機、水浴鍋、可調節移液器、可見分光光度計/酶標儀、微量玻璃比色皿/96孔板、和蒸餾水。

 

試劑組成和配制:

試劑一:液體×1瓶,4℃保存。

試劑二:液體×1瓶,4℃保存。

試劑三:液體×1瓶,4℃避光保存。

 

粗酶液提取:

1.        組織:按照組織質量(g):試劑一體積(mL)為1:5~10的比例(建議稱取約0.1g組織,加入1mL試劑一)進行冰浴勻漿。8000g,4℃離心10min,取上清置冰上待測。

2.        細菌、真菌:按照細胞數量(104個):試劑一體積(mL)為500~1000:1的比例(建議500萬細胞加入1mL試劑一),冰浴超聲波破碎細胞(功率300w,超聲3秒,間隔7秒,總時間3min);然后8000g,4℃,離心10min,取上清置于冰上待測。

3.        血清等液體:直接測定。

GSH測定操作:

1. 分光光度計/酶標儀預熱30min,調節波長到412 nm,蒸餾水調零。

2. 試劑二置于25℃(一般物種)或者37℃(哺乳動物)水浴中保溫30min。

3. 空白管:取微量玻璃比色皿或96孔板,依次加入20μL蒸餾水,140μL試劑二,40μL試劑三,混勻靜置2min后測定412 nm吸光度A1。

4. 測定管:取微量玻璃比色皿或96孔板,依次加入20μL上清液,140μL試劑二,40μL試劑三,混勻靜置2min后測定412 nm吸光度A2。

注意:空白管只需要測定一次。

 

GSH含量計算公式:

GSH標準曲線公式:y=1.5 x(x為GSH濃度,μ mol /mL;y為吸光值)

a.使用微量石英比色皿測定的計算公式如下

(1)按蛋白濃度計算

 

GSH(μ mol/ mg prot)=(A2-A1) ÷1.5×V樣÷(V樣×Cpr) =0.667×(A2-A1) ÷Cpr

(2)按樣本質量計算

GSH(μ mol/g 鮮重)=(A2-A1) ÷1.5×V樣÷(V樣÷V樣總×W)=0.667×(A2-A1) ÷W

(3)按細胞數量計算

GSH(μ mol /104 cell)=(A2-A1) ÷1.5×V樣÷(V樣÷V樣總×細胞數量)=0.667×(A2-A1) ÷細胞數量

(4)按液體體積計算

GSH(μ mol/ mL)=(A2-A1) ÷1.5×V樣÷V樣 =0.667×(A2-A1)

V反總:反應總體積,0.2mL;V樣總:上清液總體積,1 mL;V樣:加入反應體系中上清液體積,20μL=0.02 mL;Cpr:上清液蛋白質濃度,mg/mL;W:樣品質量

 

b.使用96孔板測定的計算公式如下

GSH標準曲線公式:y=0.75x(x為GSH濃度,μ mol /mL;y為吸光值)

(1)按蛋白濃度計算

GSH(μ mol/ mg prot)=(A2-A1) ÷0.75×V樣÷V樣÷Cpr =1.334×(A2-A1) ÷Cpr

(2)按樣本鮮重計算

GSH(μ mol/g 鮮重)=(A2-A1) ÷0.75×V樣÷(V樣÷V樣總×W)=1.334×(A2-A1) ÷W

(3)按細胞數量計算

GSH(μ mol /104 cell)=(A2-A1) ÷0.75×V樣÷(V樣÷V樣總×細胞數量)=1.334×(A2-A1) ÷細胞數量

(4)按液體體積計算

GSH(μ mol/ mL)=(A2-A1) ÷0.75×V反總÷V樣 =1.334×(A2-A1)

V樣總:上清液總體積,1mL;V樣:加入反應體系中上清液體積,20μL=0.02 mL;Cpr:上清液蛋白質濃度,mg/mL;W:樣品質量,g。

 

注意事項:

1.        試劑一中含有蛋白質沉淀劑,因此上清液不能用于蛋白濃度測定。

2.        Z低檢出限為0.011mmol/L。

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優利科(上海)生命科學有限公司

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