大鼠淋巴管內皮細胞處理方法及細胞說明書僅供參考，具體操作還需要根據到貨時細胞密度，細胞生長狀態等具體情況，酌情處理。

一．大鼠淋巴管內皮細胞貼壁細胞
　　客戶接收到細胞，用75%的酒精消毒（建議配制75%酒精的水是滅菌過的）培養瓶外部。
　　肉眼觀察細胞培養基顏色，顯微鏡觀察細胞生長情況，并對細胞進行不同倍數拍照（建議收到時的培養瓶拍一張照片，顯微鏡拍收到時的細胞100X,200X各一張）。
　　顯微鏡觀察細胞，當細胞融匯80%左右（可以傳代的情況下），細胞應該在37度培養箱預溫1-2h后再做處理。如未達到細胞傳代密度，培養瓶應預留一部分培養基繼續培養。
　　嚴格無菌操作，打開細胞培養瓶。
　　將細胞培養瓶內的培養基用吸管*吸出（嚴禁直接傾倒），放入另一無菌容器中（建議換新的培養基培養細胞）。
　　用PBS2-3ml/次輕輕洗細胞表面，加入適量的0.05%胰酶-EDTA消化細胞,顯微鏡下觀察細胞變圓，輕輕拍打培養瓶直到細胞脫落，加入終止液終止。
　　1000rpm,5min離心，重懸細胞。換新的細胞培養瓶，37℃,5%CO2培養。

二．大鼠淋巴管內皮細胞懸浮細胞
　　1.接收到細胞，用75%的酒精消毒（建議配制75%酒精的水是滅菌過的）培養瓶外部。
　　2.肉眼觀察細胞培養基顏色，顯微鏡觀察細胞生長情況，并對細胞進行不同倍數拍照（建議收到時的培養瓶拍一張照片，顯微鏡拍收到時的細胞100X,200X各一張）。
　　3.嚴格無菌操作，打開細胞培養瓶。
　　4.將細胞培養瓶內的培養基用吸管*吸出（嚴禁直接傾倒）。
　　5.1000rpm,5min離心，重懸細胞。換新的細胞培養瓶和新鮮培養基，37℃,5%CO2培養