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CUT&Tag是一種新的DNA—蛋白質互作研究方法。與傳統的ChIP-Seq相比，CUT&Tag技術操作簡便，無需免疫共沉淀和超聲破碎；細胞起始量低。60-100000個細胞就可以滿足需要，且CUT&Tag單細胞技術已經實現；一步完成建庫，不需要傳統的修復末端，加A，加接頭構建文庫；信噪比高。

CUT&Tag技術優勢——特異性強，背景噪音較低；靈敏度強；重復性較好；成本遠低于ChIP-Seq。

CUT&Tag技術原理：

CUT&Tag技術的核心是在Tn5上融合了protein A/G抗體結合功能域的轉座體pAG-Tn5。在進行CUT&Tag實驗時，首優良行靶蛋白特異性抗體（一抗）孵育，使抗體進入細胞與靶蛋白結合。為了放大信號，同理接著進行二抗孵育。zui后孵育pAG-Tn5轉座體，使得轉座體進入細胞并與抗體結合，這樣就把轉座體間接的固定在靶蛋白上，隨后加入Mg2+，激活Tn5酶的切割活性，打斷靶蛋白結合的DNA區域。由于Tn5連有測序接頭，在打斷的同時直接在片段化的DNA上加接頭，接著提取DNA，進行PCR擴增構建文庫。

一：CUT&Tag實驗結果進行qPCR分析

CUT&Tag實驗所獲取的DNA片段可以進行qPCR以檢測目的條帶的富集情況。CUT&Tag-qPCR與ChIP-qPCR類似，定量的長度、方法、引物設計等幾乎*一致。一般的實驗流程為：細胞與磁珠結合—一抗孵育—二抗孵育—轉座體孵育—片段化—DNA提取—qPCR檢測。整個實驗流程不超過10小時。

二：CUT&Tag實驗結果進行高通量測序（NGS）分析

CUT&Tag本身是一種高通量測序技術，zui終所獲取的實驗結果也是測序文庫。CUT&Tag的文庫與ChIP-Seq類似，都是200-1000bp左右的文庫。測序所得的數據可以用常規的分析軟件進行分析，無需特殊的分析軟件。一般的實驗流程為：細胞與磁珠結合—一抗孵育—二抗孵育—轉座體孵育—片段化—DNA提取—PCR構建文庫—文庫純化—質檢—測序。整個實驗流程約10小時。

三、CUT&Tag技術對不同的靶蛋白具有廣泛的適用性

CUT&Tag與ChIP-seq一樣，對常見的組蛋白和轉錄因子具有很好的適用性。多篇引用文章證實，CUT&Tag對RAR、CCKBR、TWIST2（轉錄因子）、JUN、JUNB、PIM1、Runx1、SOX15等DNA直接或者間接結合蛋白都具有很好的適用性。即CUT&Tag技術適用于全基因組范圍內的DNA-蛋白質互作研究。

四、CUT&Tag技術對不同的細胞樣本具有廣譜的適用性

CUT&Tag技術對實驗室常規的模式生物和細胞系都有很好的適用性。這些模式生物包括人、動物、植物、微生物樣本。CUT&Tag技術在HepG2 cell、RAW246.7 cell、KYSE cell、Human primary cell、Human Tissure cell、hPSCs、K562 cell、mouse ES cell、HEK293T cell、mouse MEFs cell、mouse embryos cell、mouse brain cell、NIH3T3 cell、CD4+T cell、HeLa S3 cell、H1 hESCs cell、CD8+T cell、果蠅細胞、muscle stem cell、擬南芥、水稻、棉花等細胞樣本中已經得到了應用，可見，CUT&Tag技術對實驗室常規細胞樣本具有廣譜的適用性，含有細胞壁的細胞也適用。

艾美捷 CUT&Tag技術 相關研究工具：

cat# 名稱   時長

P-2028 EpiNext CUT&RUN Fast Kit  <3小時

P-9018 EpiQuik CUT&RUN m6A RNA Enrichment (MeRIP) Kit  <3小時

P-9016 EpiNext CUT&RUN RNA m6A-Seq Kit  <6小時

P-2032 EpiNext cTIP (CUT&Tag In-Place)-Sequencing Kit  <5小時