免疫熒光（IF）是在免疫學、生物化學和顯微鏡技術的基礎上建立起來的一項檢測技術。可用于檢測和識別細胞和組織中蛋白質及其他分子的亞細胞分布和遷移。那么你知道免疫熒光實驗的步驟有哪些嗎？讓我們一起來看看吧！

一、細胞準備

對于單層生長的細胞，將細胞接種到預先處理過的蓋玻片的培養(yǎng)皿中，待細胞接近長成單層后取出蓋玻片，用PBS洗滌兩次。

對于懸浮生長的細胞，取對數(shù)生長的細胞，用PBS離心洗滌（1000rpm, 5min）兩次，然后用細胞離心甩片機制備細胞片或直接制備細胞涂片。

二、固定

根據(jù)需要選擇適當?shù)墓潭▌﹣砉潭毎?/p>

固定完畢后的細胞可置于含有疊氮納的PBS中，在4℃保存3個月。用PBS洗滌3次，每次洗滌5分鐘。

三、通透

對于使用交聯(lián)劑（如多聚甲醛）固定的細胞，一般需要在加入抗體之前進行通透處理，以確保抗體能夠到達抗原部位。選擇通透劑時應充分考慮抗原蛋白的性質。通透時間一般在5-15分鐘。通透后用PBS洗滌3次，每次洗滌5分鐘。

四、封閉

使用封閉液對細胞進行封閉處理，時間一般為30分鐘。

五、一抗結合

在室溫孵育1小時或者在4℃過夜。用PBST洗滌3次，每次沖洗5分鐘。

六、二抗結合

對于間接免疫熒光，需要使用二抗。在室溫避光孵育1小時。用PBST洗滌3次，每次沖洗5分鐘，然后再用蒸餾水洗滌一次。

七、封片及檢測

滴加一滴封片劑，然后封片，最后使用熒光顯微鏡進行檢查。

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