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1、實驗前準備

試劑準備

40% Percoll溶液配制：

Percoll細胞分離液與PBS緩沖液(10×)按體積比9:1混合，配制等滲100% Percoll母液。用100% Percoll母液和RPMI 1640/1×PBS按體積比4:6混合，配制40%等滲Percoll溶液。

80% Percoll溶液：

Percoll細胞分離液與PBS緩沖液(10×)按體積比9:1混合，配制等滲100% Percoll母液。用100% Percoll母液和RPMI 1640/1×PBS按體積比8:2混合，配制80%等滲Percoll溶液。

2、腸道固有層免疫細胞分離步驟操作步驟

1）頸椎脫臼法處死小鼠并固定在手術臺上，75%酒精消毒小鼠腹部，于正中縱行剪開暴露腹腔；

2）如下圖所示，在小鼠胃與十二指腸連接處剪斷，一邊分離小腸周圍脂肪組織和腸系膜，一邊拉出小腸，之后在小腸和盲腸連接處剪斷，從而分離出小腸。

小鼠腸道組織解剖圖

3）10cm培養皿中加入5mL 4°C預冷的PBS，將步驟2中的小腸放入培養皿潤洗，使用鑷子和剪刀依次去除脂肪組織和派伊爾結。

小鼠派伊爾結去除操作圖

A. 去除表面脂肪和腸系膜等組織的小腸，紅色箭頭指示派氏結（平均每只小鼠有6-9個派氏結）；

B. 剪去派氏結的操作示意圖；

C. 去除派氏結后的小腸，紅框是所有剪下來的所有派氏結。

小鼠派伊爾結(Peyer's patches, PPs)是小鼠腸道黏膜免疫系統的重要組成部分，主要分布在小鼠小腸的下部，即遠端空腸和回腸，與小鼠固有層免疫細胞的組成和功能有顯著差異，在分離小鼠腸道免疫細胞時，去除派伊爾結是為了確保獲得更純凈、更具代表性的目標細胞群體，從而提高實驗結果的可靠性。

4）將小腸切成4段，用剪刀縱向剪開小腸（不必沿著腸系膜方向），暴露出腸內容物，輕輕地將腸內容物從粘膜表面刮除；

5）將小腸轉移到含有10mL HBSS + 2%FBS的50mL離心管中，劇烈渦旋10-20s；

6）用鑷子取出小腸重復清洗2次；

7）將清洗過的腸組織，剪碎成0.5cm的小片段，將組織塊(100-200mg)轉移到2mL圓底管中，加入1mL小鼠腸道組織解離液(abs50093)，37°C水平搖床輕輕搖晃孵育60min（根據組織糜爛狀態適當延長孵育時間）；

8）從水平搖床中取出圓底管，劇烈渦旋10-20s，通過70μm細胞篩網(abs7232)過濾，用10mL PBS沖洗細胞篩網；

9）收集含有細胞的濾液到50mL管中，20°C下400g離心5min，棄上清液，用 4 mL 40% percoll（abs9102）重懸細胞沉淀并轉移到 15 mL 離心管；

10）吸取 2.5 mL 80% percoll 深入到 15 mL 離心管底部，試管稍微傾斜，將 4 mL 40% percoll 與細胞的混合液沿著管壁緩慢加入離心管，覆蓋在 80% percoll 溶液的頂部形成密度梯度；

▲ 注意：不要破壞 80% percoll 和 40% percoll 與細胞的懸浮液的分界面，40% 和 80% percoll 現配現用。

11）800 g 20 °C 離心 20 min，升速（ACC）1，降速（DEC）1；

Percoll 分離組織免疫細胞示意圖

注：分離圖片參考自文獻 DOI: 10.21769/BioProtoc.1010327

12）離心結束后，吸取中間白膜層免疫細胞至新的 15 mL 離心管中，加入 3 倍體積 4°C 預冷 PBS，上下顛倒混勻，4 °C 下 400 g 離心 5 min，棄上清；

13）按照步驟 12 重復清洗一次，棄上清得到腸道固有層淋巴細胞；

14）細胞染色緩沖液（abs9475）重懸細胞沉淀，并調整細胞濃度至 5-10×10⁶ cells/mL，將 100 μL/管的細胞懸液分配到 12×75 mm 的流式管（abs7303）中用于后續實驗操作。

3、流式實驗結果圖

4、相關產品推薦

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