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上海士鋒生物科技有限公司

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技術文章

士鋒生物:溶血空斑實驗-抗體產生細胞總數的檢測

點擊次數:1737 發布時間:2013-7-21

取綿羊細胞免疫的小鼠脾臟,制成脾細胞懸液,與一定量的指示細胞(綿羊細胞)和補體結合,注入自制的小室內,經37℃孵育后,單個散在的抗體形成釋放抗體,抗體與周圍的綿羊紅細胞(抗原)結合,并在補體參與下,使綿羊細胞溶解,結果在抗體形成細胞周圍形成肉眼可見的圓形透明溶血區——溶血空斑。計算溶血空斑數目,則可推算脾內存在的抗體產生細胞總數。

材料:

1. 20—22克健康小鼠

2. 解剖器械

3. 注射器,平皿,漏斗,紗布,研缽

4. 20%綿羊紅細胞懸液

5. 潔凈脫脂載玻片(75ⅹ25毫米),蓋玻片(22ⅹ22毫米)。

6. Ph7.2的Hanks液,凡士林油。

7. 微量加樣器

8. 指示細胞懸液,配制方法如下:

10%綿羊紅細胞 0.5毫升

補體(新鮮豚鼠血清)0.5毫升

含5%小牛血清的Hanks液 2毫升 混合后水浴備用

方法:

1.免疫動物

取25%綿羊紅細胞懸液1毫升,無菌操作注入小鼠腹腔中

2.脾細胞液的制備

(1)小鼠免疫4天后,頸椎脫位處死,取脾臟,去除脂肪組織,放平皿內,用冷Hanks液洗1—2次。

(2)取出脾臟研缽中研碎,加Hanks液2—3毫升,用吸管反復吹打數次,使細胞分散。將此細胞懸液經4—8層紗布過濾,1500轉/分離心5分鐘,棄上清。

如細胞太多,可加蒸餾水4毫升迅速混勻,半分鐘后立即加入等量Hanks液混勻1000轉/分離心10分鐘,棄上清。

(3)沉淀細胞用Hanks液洗1—2次,棄上清后,加Hanks液使總量達5毫升。用乳頭吸管吹打使沉淀細胞懸起混勻,此即為50倍稀釋的脾細胞。

(4)取此懸液0.1毫升放另一小試管中然后加0.9毫升Hanks液使成500倍稀釋的脾細胞懸液。

*脾細胞懸液制備過程中應在冰水浴中進行。

3.玻片小室的制作

取潔凈(無油)的載玻片,按下圖粘三條透明膠帶,在膠帶上薄涂一層凡士林(勿涂到小室內),然后用鑷子取兩個蓋片,分別放在其上,制成兩個小室。用鑷子尾端將蓋片壓平貼牢(保持小室一定體積)。用凡士林將蓋片底端(其中的任一端)封住,頂端作為注入細胞混合液。

4.細胞混合液的配制

取小試管一只,用1毫升吸管吸取0.2毫升指示細胞懸液,用另一吸管吸取0.2毫升500倍稀釋的脾細胞懸液,混勻即為被檢的細胞混合懸液。

5.混合細胞的灌注

用100ul的微量加樣器吸取被檢細胞混合懸液,于小室開口一端輕輕將液體注滿小室(勿使氣泡產生,勿使液體外溢),記錄實際注入的細胞懸液微升數(約70ul)

每個樣品注2個小室,取其平均值。

6.用牙簽粘取少許凡士林益封小室開口。

7.將作好的標本水平置濕盒中,放37℃溫箱中孵60分鐘

8.溶血空斑計數

肉眼觀察空斑并計數兩個小室出現的溶血空斑數。對模糊不清的空斑可在低倍鏡下檢查,真正的溶血空斑必須中心有一個淋巴細胞,周圍為透明區。

 

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