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上海起發實驗試劑有限公司

腮腺組織消化手冊

時間:2016-2-16閱讀:839
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Worthington組織消化指南

引言

組織消化酶主要用于組織培養和細胞生物學研究的原代細胞的分離和收集。盡管這些消化酶已經普遍應用多年,但是對其組織消化和細胞收集的作用機制卻沒有全面的理解。  由此導致的結果便是選擇一種消化方法大多是隨機選擇或基于過去的經驗,而不是在*理解消化原理的基礎上選擇的消化方案,以及如何根據具體實驗目的修正消化方案以獲得更好的實驗結果。

細胞分離程序的目的是zui大程度的獲得功能活性的單個細胞,而影響結果的原因有很多,包括(不限于)以下:

1、組織類型

2、物種來源

3、動物年齡

4、遺傳改造情況(如knockouts

5、所用的消化培養液

6、所用的酶

7、消化酶中的雜質

8、所用消化酶的工作濃度

9、溫度

10孵育時間

通常前四個原因沒辦法選擇,而剩下的原因一般由經驗決定以獲取zui適實驗結果。

通過查閱文獻來選擇*組織消化酶和zui適消化條件的研究人員通常被互相矛盾的實驗數據搞得一頭霧水。這些巨大差異來源于組織胞外基質的復雜而動態的特性,以及過去常用的粗制、未提純的組織分離酶。另外,組織胞外基質由各種蛋白、糖蛋白、脂類和糖脂組成,這些成分的組成比例在不同物種、不同組織、甚至不同發育(年齡)之間存在明顯的差異,這些因素都極大的影響了消化方案的制定。目前通常使用的粗制酶,如鏈霉蛋白酶、NF1:250、以及含有幾種其他不同濃度蛋白酶的膠原酶、以及各種多糖酶、核酶和脂酶。

本指南總結了目前常用組織消化酶的zui適消化和細胞收集知識和方法,描述了標準的實驗步驟, 便于制定一個*的細胞分離方案,同時列舉了一些相關的參考文獻。

下表列出多種組織的適宜消化酶(含參考文獻,以組織類型和物種分類,詳見鏈接)

脂肪組織

腎上腺組織

骨組織

腦組織

軟骨組織

結腸組織

內皮組織

上皮組織

心臟

淋巴結

乳腺

其它組織

其他組織

肌組織

神經組織

胰腺

腮腺

垂體

前列腺

生殖

動物鱗片

皮膚

脾臟

干細胞

胸腺

甲狀腺/甲狀旁腺

扁桃體

腫瘤

 

 

 

注:使用Worthington公司消化酶的文獻不限于上表鏈接中所列,一般而言,Worthington公司的組織消化酶可用于大多組織類型的消化。

 

腮腺組織消化手冊

 

物種詳細來源細胞名稱消化用酶培養基參考文獻
小鼠小鼠Parotid and sublingual glandularNeutral Protease: 50 u/mlPBSOgawa, M., Oshima, M., Imamura, A., Sekine, Y., Ishida, K., Yamashita, K., Nakajima, K., Hirayama, M., Tachikawa, T. and Tsuji, T.: Functional Salivary Gland Regeneration by Transplantation of a Bioengineered Organ Germ., Nat Commun 4, 2498, 2013
Collagenase Type 1: 100 u/ml
大鼠Wistar大鼠, 雄性, 130 克AcinarCollagenase: 75 u/mlRPMI 1640Looms, D., Dissing, S., Tritsaris, K., Pedersen, A. and Nauntofte, B.: Adrenoceptor-Activated Nitric Oxide Synthesis in Salivary Acinar Cells., Adv Dent Res 14, 62, 2000
Hyaluronidase: 153 u/ml
大鼠SD大鼠,  100-120 克Parotid acinar cellsCollagenase Type 2: 90 u/mlKrebs-Henseleit BicarbonateD'Silva NJ, DiJulio DH, Belton CM, Jacobson KL, Watson EL: Immunolocalization of Rap1 in the rat parotid gland: detection on secretory granule membranes, J Histochem Cytochem 45, 965-73, 1997
大鼠SD大鼠, 雄性EpithelialCollagenase: 50-75 u/mlHBSS CFPrasad, K.N., Edwards-Prasad, J., Carvaiho, I., LaRosa, F.G., Baibinder, E., Meyers, A., and Quissell, D.: Establishment of Primary Cultures of Rat and Human Parotid Epithelial Cells for Transfection Experiments, In Vitro Cell Dev Biol 28, 493, 1992
Hyaluronidase: 0.1%
大鼠SD大鼠, 雄性, 100-150 克Parotid acinarTrypsin: 0.001%F12 mediumYeh, C., Mertz, P., Oliver, C., Baum, B., and Kousvelari, E.: Cellular Characteristics of Long-Term Cultured Rat Parotid Acinar Cells, In Vitro Cell Dev Biol 27, 707, 1991
大鼠Wistar大鼠,  雄性Parotid acinarTrypsin: 0.02%Solution BFoskett, J., Roifman, C. and Wong, D.: Activation of Calcium Oscillations by Thapsigargin in Parotid Acinar Cells, J Biol Chem 266, 2778, 1991
(See reference)
大鼠大鼠ParotidHyaluronidase: 0.025%HBSS with 20mM HEPESTakuma, T. and Ichida, T.: Amylase Secretion From Saponin-Permeabilized Parotid Cells Evoked by Cyclic AMP, J Invest Dermatol 103, 95, 1988
大鼠Wistar大鼠, 雄性, 250 - 350 克Acinar, parotidHyaluronidase: 0.015%Earle's MEMMelvin, J., Kawaguchi, M., Baum, B., and Turner, R.: A Muscarinic Agonist-Stimulated Chloride Efflux Pathway is Associated With Fluid Secretion in Rat Parotid Acinar Cells, Biochem Biophys Res Commun 145, 754, 1987
大鼠SD大鼠, 雄性, 50 - 125 克AcinarTrypsin: 0.01%HBSS, CMFOliver, C., Waters, J., Tolbert, C., and Kleinman, H.: Growth of Exocrine Acinar Cells on a Reconstituted Basement Membrane Gel, In Vitro Cell Dev Biol 23, 465, 1987
Exorbital lacrimal, parotid, pancreas
大鼠SD大鼠, 白化變種, 雄性, 150-200 克Acinar, parotidTrypsin: 0.01%HBSS CMFMangos, J., McSherry, N., Butcher, F., Irwin, K., and Barber, T.: Dispersed Rat Parotid Acinar Cells (Morphological, Functional Character), Am J Physiol 229 (3), 560, 1975
Collagenase: 40-50 u/ml
Hyaluronidase: 0.10%

 

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