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關于小鼠肝組織DNA的提取
閱讀：3300 發布時間：2013-1-11實驗原理
真核生物DNA主要以核蛋白形式存在于細胞核中，因此制備DNA必須先粉碎組織，裂解細胞膜和核膜，使核蛋白釋放，在除去蛋白質、脂類、糖類和 RNA等物質，得到純化的DNA。在本實驗的提取DNA反應體系中，SDS（十二烷基磺酸鈉）破壞細胞膜和核膜，并使蛋白質變性，將核蛋白中的DNA與蛋白質分開，EDTA及SDS抑制細胞中的DNA酶的活性。用酚、氯仿抽提的方法進一步除去蛋白質，得到的DNA溶液經乙醇沉淀除凈小分子化合物。提取出的 DNA制品進一步用含溴乙錠的瓊脂糖凝膠電泳加以鑒定。
主要試劑
1. 生理鹽水
2. 裂解緩沖液
3. 苯 酚：氯 仿混合液（1：1）
4. 無水乙醇
5. 70％乙醇
6. TE緩沖液
7. 溴酚藍載樣液
8. 溴乙錠溶液
9. TBE緩沖液
主要設備
1. 研缽
2. 研缽棒
3. 刻度離心管
4. 普通離心機
5. 小試管
6. Ep管
實驗材料
小鼠
實驗步驟
1. 處死小鼠，迅速取出小鼠肝臟，用生理鹽水洗去附著血液，用濾紙吸干血水后稱量0.5g肝實質組織放于研缽中。
2. 研缽中加入1ml裂解緩沖液、少量石英砂，研磨至勻漿，再加入2ml繼續研磨至勻漿。
3. 取刻度離心管一支，加肝勻漿至1.0ml，再加入等體積苯酚：氯仿混合液抽提，每次抽提以中等大小的力來回振蕩5min，然后離心 3000r/min，10min，水相吸入另一干凈的小試管中，抽提重復3次。
4. 往乘有上水相的小試管中加入2.5倍體積的冷無水乙醇，輕輕混勻，此時可見有白色絮狀沉淀，此即DNA粗制品。
5. 將試管中的上清液倒出，保留沉淀。用70％的乙醇洗滌沉淀2次，洗滌時動作要輕柔，同上法棄上清保留沉淀。
6. 加入0.25mlTE緩沖液溶解沉淀。
7. 取30ml沉淀溶解液放入Ep管中。
8. 向Ep管中加入溴酚藍載樣液5ml，混勻后即為鑒定所用樣品。
9. 取瓊脂糖0.3g，TBE緩沖液15ml加入錐形瓶中，加熱錐形瓶使瓊脂糖充分熔解后，加入10ml溴乙錠，混勻后將膠液倒入已放置樣孔梳的膠板上。
10. 待膠板凝好后拔去樣孔梳，取15ml樣品液加入樣孔槽中。
11. 將加好樣品液的膠板放入乘有TBE緩沖液的電泳槽中，樣孔槽位于陰極側，蓋好電泳槽蓋后通電，調節電壓100V電泳40-60min。
12. 泳畢，拿出膠板，在紫外光燈下觀察結果。
注意事項
1. 吸水相時不要將界面上的變性蛋白質混入，抽提3次后一般有機相和水相界面上的變性蛋白質極少，肉眼基本看不見，若變性蛋白質仍較多，可增加抽提次數。實驗中使用的吸取DNA水溶液的滴管管口需粗而短，并燒成鈍口。
2. zui后一次棄上清時，盡可能去盡上清。